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Nehmen Sie ein bakterielles Lysat, das hydrophile Proteine, Lipoproteine und Proteinaggregate enthält.
Fügen Sie ein kaltes, nichtionisches Reinigungsmittel hinzu, das bei wärmeren Temperaturen eine Phasentrennung ermöglicht.
Auf Eis inkubieren und regelmäßig mischen. Das Detergens bindet an den Lipidanteil des Lipoproteins und bildet Protein-Detergens-Komplexe.
Erwärmen Sie die Mischung, um eine Phasentrennung zu induzieren. Lipoproteine konzentrieren sich in der detergenden Phase, während hydrophile Proteine in der wässrigen Phase verbleiben.
Bei Raumtemperatur zentrifugieren, um die zweiphasige Trennung aufrechtzuerhalten.
Entsorgen Sie die wässrige Phase, fügen Sie der Waschmittelphase einen kalten Puffer hinzu und mischen Sie.
Wiederholen Sie den Kühl-, Erwärmungs- und Zentrifugationszyklus, um Lipoproteine anzureichern.
Fügen Sie dann kalten Puffer hinzu und zentrifugieren Sie bei niedriger Temperatur, um die Nicht-Lipoprotein-Aggregate zu pelletieren.
Der Überstand wird in ein Röhrchen mit einem proteinfällenden Lösungsmittel überführt und bei Minustemperaturen inkubiert, um Lipoproteine auszufällen.
Bei Raumtemperatur zentrifugieren und den Überstand verwerfen.
Die gefällten Lipoproteine sind bereit für nachgelagerte Studien.
Ergänzen Sie den Überstand mit TX-114 Tensid auf eine Endkonzentration von 2 %, indem Sie ein gleiches Volumen von 4 % Tensid in eiskaltem TBSE hinzufügen. Den ergänzten Überstand eine Stunde lang auf Eis inkubieren und alle 15 Minuten durch Inversion mischen. Übertragen Sie das Röhrchen in ein 37 Grad Celsius heißes Wasserbad und inkubieren Sie es 10 Minuten lang, um eine Phasentrennung zu induzieren.
Die Probe wird 10 Minuten lang bei Raumtemperatur bei 10.000 g zentrifugiert, um eine zweiphasige Trennung aufrechtzuerhalten. Die obere wässrige Phase vorsichtig abpipettieren und verwerfen. Geben Sie eiskaltes TBSE in die untere Tensidphase, um das Röhrchen wieder auf sein ursprüngliches Volumen zu füllen, und invertieren Sie es zum Mischen.
10 Minuten auf Eis inkubieren. Nach der Inkubation wird das Röhrchen in ein 37 Grad Celsius heißes Wasserbad überführt und 10 Minuten lang inkubiert, um eine Phasentrennung zu induzieren, und dann 10 Minuten lang bei Raumtemperatur bei 10.000 g zentrifugieren. Nachdem Sie diese Schritte noch einmal für insgesamt drei Trennungen wiederholt haben, entfernen Sie die obere wässrige Phase und verwerfen Sie.
Entfernen Sie das Pellet aus gefällten Proteinen, das sich im Laufe der Extraktionen gebildet hat, indem Sie der Tensidphase ein Volumen eiskaltes TBSE zusetzen. Zentrifugieren Sie bei vier Grad Celsius und 16.000 g für zwei Minuten, um das unlösliche Protein zu pelletieren. Den Überstand sofort in ein frisches 2,0-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen mit 1.250 Mikrolitern 100 % Aceton umfüllen.
Mischen Sie die Probe durch Inversion und inkubieren Sie sie über Nacht bei minus 20 Grad Celsius, um das Protein auszufällen. Am nächsten Tag zentrifugieren Sie die Probe bei 16.000 g für 20 Minuten bei Raumtemperatur, um die Lipoproteine unter Berücksichtigung der Ausrichtung des Röhrchens zu pelletieren. Waschen Sie das Pellet zweimal mit 100 % Aceton, bevor Sie das Aceton umfüllen und die Probe an der Luft trocknen lassen.
Fügen Sie dann 20 bis 40 Mikroliter 10-millimolares Tris-HCL mit einem pH-Wert von 8,0 hinzu und resuspendieren Sie das Pellet gründlich, indem Sie mit den gefällten Lipoproteinen gegen die Wand auf und ab pipettieren.