Synthese von Nanodisc-stabilisierten Membranprotein-Antigenen mit einem zellfreien System

0 Ansichten4:46 Min. • September 26th, 2025

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Nehmen wir ein bakterielles zellfreies System, das keine intakten Zellstrukturen aufweist, aber die molekularen Komponenten beibehält, die für die In-vitro-Transkription und -Translation erforderlich sind.

Einführung von Plasmiden, die für das Membranprotein-Antigen und das Gerüstprotein kodieren, zusammen mit synthetischen Phospholipiden und Polymeren.

Ergänzen Sie die Mischung mit ATP, GTP und einer Aminosäuremischung, um die Proteinsynthese zu initiieren.

Bereiten Sie gleichzeitig eine mit der Aminosäuremischung angereicherte Futterlösung vor.

Laden Sie das Gemisch in die innere Kammer und die Futterlösung in die äußere Kammer eines Dialysegeräts mit zwei Kammern.

Während der Inkubation diffundieren die Substrate durch die semipermeable Membran von der äußeren in die innere Kammer und erleichtern so die Plasmidtranskription und die Proteintranslation.

Das Gerüstprotein baut die Phospholipide und Polymere zu Lipid-Nanoscheiben auf und erleichtert die Faltung und den Einbau von MPA in diese Strukturen.

Nebenprodukte, die während der Reaktion entstehen, diffundieren in die äußere Kammer, wodurch optimale Bedingungen für die Nanodisc-stabilisierte MPA-Bildung aufrechterhalten werden.

Bereiten Sie MOMP-tNLPs mit einer zellfreien Methode vor.

Tauen Sie den Rekonstitutionspuffer zwei Stunden vor dem Einstellen der Reaktion aus dem zellfreien Proteinexpressionskit auf und fügen Sie dem Puffer einen EDTA-freien Proteaseinhibitor hinzu. Verwenden Sie ein Kit, das für die Durchführung von fünf Ein-Milliliter-Reaktionen ausgelegt ist. Geben Sie für jede Ein-Milliliter-Reaktion 525 Mikroliter Rekonstitutionspuffer in die E.coli-Lysatflasche und rollen Sie sie, um sich aufzulösen.

250 Mikroliter des Rekonstitutionspuffers werden in die Reaktionsflasche mit dem Additiv gegeben und durch Walzen aufgelöst. Geben Sie dann 8,1 Milliliter Rekonstitutionspuffer in die Reaktionsfutterflasche und rollen Sie sie, um sie aufzulösen. Geben Sie zu einer Flasche Aminosäuremischung drei Milliliter Rekonstitutionspuffer, um ihn aufzulösen.

Geben Sie in eine weitere Flasche Methionin 1,8 Milliliter Rekonstitutionspuffer, lösen Sie ihn auf und lagern Sie ihn auf Eis. Geben Sie 225 Mikroliter der rekonstituierten Mischung, 270 Mikroliter der rekonstituierten Aminosäuremischung ohne Methionin und 30 Mikroliter rekonstituiertes Methionin in die E.coli-Lysatflasche . Geben Sie ferner 400 Mikroliter des DMPC/Telodendrimer-Gemisches, 15 Mikrogramm MOMP-Plasmid und 0,6 Mikrogramm Delta-49 ApoA1 in die Mischung und mischen Sie es.

Aliquotieren Sie 20 Mikroliter der Gesamtlösung in einem 1,5-Milliliter-Röhrchen Für eine GFP-exprimierende Kontrollreaktion. Bereiten Sie eine Futterlösung vor, indem Sie 2,65 Milliliter der rekonstituierten Aminosäuremischung ohne Methionin und 300 Mikroliter rekonstituiertes Methionin hinzufügen. Einen Milliliter der Reaktionslösung in die innere Reaktionskammer des zellfreien Reaktionskits überführen und verschließen.

Füllen Sie die äußere Kammer des Reaktionsgefäßes mit 10 Millilitern der Zuführlösung und verschließen Sie diese. 0,5 Mikroliter des GFP-Kontrollplasmids werden zu den 20-Mikroliter-Aliquoten des Reaktionsgemisches hinzugefügt. Legen Sie die Reaktion 18 Stunden lang bei 30 Grad Celsius bei 300 Umdrehungen pro Minute in einen Shaker.

Überwachen Sie die Reaktion unter UV-Licht nach 15 Minuten auf Fluoreszenz aufgrund der GFP-Synthese.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026