Selektive Anreicherung und Identifikation von Salmonellenarten mit Xyloselysin-Desoxycholat und chromogenem Agar

0 Aufrufe2:10 Min. • November 28th, 2025

Inokulieren Sie eine Kultur, die sowohl Salmonellen - als auch Nicht-Salmonellenarten enthält, in ein Selenit-Cystinmedium und inkubieren.

Selenit hemmt das Wachstum selenempfindlicher Bakterien, indem es deren Stoffwechselprozesse stört.

Selentolerante Bakterien, einschließlich Salmonellen, können jedoch Selenit metabolisieren und wachsen.

Die Kultur auf Xyloselysin-Desoxycholat oder XLD-Agar streichen und inkubieren.

Salmonellen reduziert Natriumthiosulfat im XLD-Agar zu Schwefelwasserstoff, das mit Eisenionen im Medium reagiert und schwarzes Eisensulfid bildet, wodurch Kolonien mit schwarzen Zentren entstehen.

Im Gegensatz dazu bilden Nicht-Salmonellen-Arten , die kein Schwefelwasserstoff produzieren, Kolonien ohne schwarze Zentren, was eine visuelle Unterscheidung von Salmonellen ermöglicht.

Wählen Sie eine schwarz zentrierte Kolonie aus und streifen Sie sie auf Salmonella-chromogenes Agar für eine erhöhte Spezifität.

Chromogener Agar enthält salmonellenspezifische Enzymsubstrate, die mit Chromophoren verknüpft sind.

Salmonellenenzyme spalten diese Substrate, setzen die Chromophoren frei und bilden pigmentierte Kolonien.

Wählen Sie diese Kolonien zur weiteren Analyse aus.

Fügen Sie 100 Mikroliter der Voranreicherungskultur zu fünf Millilitern Selenitkristallmedium hinzu. Anschließend wird die Kultur bei 36 Grad Celsius für 18 bis 24 Stunden inkubiert. Als Nächstes sammeln Sie eine Schleife der Kultur und verteilen Sie sie auf einem Teller.

Dann wird die Platte bei 36 Grad Celsius für 18 bis 24 Stunden inkubiert. Nach der Brutzeit wählen Sie verdächtige Kolonien aus und übertragen Sie sie auf eine Platte. Inkubieren Sie die Platte bei 36 Grad Celsius für 18 bis 24 Stunden.