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Mikrobiologie
0 Ansichten • 5:43 Min. • November 28th, 2025
Nehmen wir ein Blatt, das mit Candidatus liberibacter, einem pathogenen Bakterium, infiziert ist.
Schneiden Sie es in Stücke, frieren Sie es in flüssigem Stickstoff ein und mahlen Sie es, um die Pflanzenzellen zu zerreißen und deren Inhalt, einschließlich der Bakterien, freizusetzen.
Fügen Sie einen Kern-Lysepuffer hinzu und mischen Sie gründlich.
Inkubieren Sie bei hoher Temperatur, um die Membranen zu lysieren, wodurch genomische DNA aus Pflanzenkernen und Bakterienzellen freigesetzt wird.
Fügen Sie das RNase-Enzym hinzu, wenden Sie die Röhre um, um zu mischen, und inkubieren, um RNA abzubauen.
Fügen Sie eine Protein-Niederschlagslösung hinzu und mischen Sie diese zur Förderung der Proteinaggregation. Zentrifugiere zu Pelletproteinen und Zellresten.
Übertragen Sie das Supernatant in ein Rohr mit Isopropanol und mischen Sie, um die DNA in sichtbare Stränge auszufällen. Zentrifuge, um die DNA zu pelletieren.
Waschen Sie die Pellets mit Ethanol, um Verunreinigungen zu entfernen, lassen Sie sie an der Luft trocknen und die DNA rehydrieren.
Inkubieren Sie bei hoher Temperatur, um die DNA löslich zu machen, und laden Sie dann eine Probe in eine Mikrocuvette.
Mit einem Spektrophotometer wird die isolierte DNA-Konzentration gemessen.
Zuerst benutzt man eine saubere Schere, um ein ganzes frisches Blatt von einem Zitrusbaum abzuschneiden, und legt es in eine saubere Plastik-Sandwichtüte. Anschließend kühlen Sie einen Mörser und Stößel, indem Sie eine kleine Menge flüssigen Stickstoffs hinzufügen. Anschließend verwenden Sie die Schere, um kleine Stücke des Blattgewebes von etwa einem Quadratzoll zu schneiden.
Geben Sie die Blattstücke sofort in den Mörtel, um sie einzufrieren. Beginnen Sie schnell, das Blattgewebe mit dem Mörser zu mahlen, bis der flüssige Stickstoff verdunstet ist und ein feines grünes Pulver übrig bleibt. Als Nächstes kühlen Sie einen Metallpfannenwender 10 bis 15 Sekunden in flüssigem Stickstoff. Dann benutze den kalten Pfannenwender, um das gemahlene Gewebe aus dem Mörtel in einem 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenrohr zu schöpfen.
Verwenden Sie eine 1000-Mikroliter-Pipette, um 600 Mikroliter Kern-Lyselösung zur Probe hinzuzufügen. Dann wirbelt die Probe ein bis drei Sekunden lang vortex. Inkubieren Sie das Rohr bei 65 Grad Celsius in einem Wasserbad für 15 Minuten.
Nach Ablauf der Inkubationszeit verwenden Sie eine 10-Mikroliter-Pipette, um 3 Mikroliter RNase-Lösung zum Lysat hinzuzufügen, um RNA zu entfernen. Dann mischen Sie den Inhalt des Röhrchens zwei- bis fünfmal um.
Inkubieren Sie bei 37 Grad Celsius für 15 Minuten in einem Kabinett-Inkubator. Nach 15 Minuten werden 200 Mikroliter Protein-Ausfällungslösung zur Probe hinzugefügt. Wirbel das Rohr mit hoher Geschwindigkeit 20 Sekunden lang vortex. Zentrifugiere die Probe anschließend bei 13.000 g für drei Minuten.
Während der Zentrifugation werden 600 Mikroliter Isopropanol bei Raumtemperatur in ein neues 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenrohr gegeben. Nach Abschluss der Zentrifugation entfernt man vorsichtig den Überstandsstoff aus dem Zentrifugenröhrchen in das Rohr mit Isopropanol. Wirf das Pellet weg.
Drehen Sie das Rohr um, damit die DNA sichtbar wird, wie ein fadenartiger Strang. Als Nächstes zentrifugieren Sie die Probe bei 13.000 g für eine Minute bei Raumtemperatur.
Kippen Sie das Supernatant nach der Zentrifugation ab. Dann geben Sie 600 Mikroliter 70 % Ethanol zum Pellet. Drehen Sie das Rohr mehrmals um, um das Pellet zu waschen.
Zentrifugiere das Rohr bei 13.000 g für eine Minute. Nach Abschluss der Zentrifugation wird das Supernatant vorsichtig aspiriert. Dann drehe ich das Rohr mit offenem Deckel auf ein saugfähiges Papier, um es 15 Minuten an der Luft zu trocknen.
Nach dem Trocknen geben Sie dem Pellet 100 Mikroliter DNA-Rehydrationslösung hinzu. Inkubieren Sie die DNA-Suspension eine Stunde lang bei 65 Grad Celsius in einem Wasserbad. Klopfen Sie regelmäßig auf das Rohr während des Mischens.
Gib 1 Mikroliter gereinigtes Wasser in eine Mikroküvette. Auf dem Spektrophotometer wurde das Wasser als leer angezeigt. Dann gibt man 1 Mikroliter der Probe in die Mikrocuvette. Setzen Sie die Mikrocuvette auf das Spektrophotometer und erhalten Sie die DNA-Konzentration.
Dieser Artikel beschreibt eine Methode zur Isolierung von genomischer DNA aus Zitrusblättern, die mit dem pathogenen Bakterium Candidatus liberibacter infiziert sind. Der Prozess umfasst das Schnellgefrieren, Zerkleinern und die Verwendung verschiedener Lösungen zur Extraktion und Reinigung der DNA.
Die Gewinnung von hochwertiger genomischer DNA aus von Krankheitserregern befallenen Pflanzengeweben ermöglicht eine mechanistische Risikominderung bei der Zielstrukturvalidierung für die Entwicklung von Agrochemikalien und Biopestiziden. Dieses Protokoll unterstützt die Vorhersagegenauigkeit, indem es gereinigte Nukleinsäuren bereitstellt, die für nachfolgende Genotypisierungen, die Entdeckung von Biomarkern sowie Untersuchungen zu Wirt-Pathogen-Interaktionen geeignet sind. Die Methode schließt eine entscheidende Lücke bei der Vorbereitung krankheitsrelevanter Systeme für die Identifizierung von Leitstrukturen und die translationale Biomarker-Analyse in pflanzenpathologischen Arbeitsabläufen.
Die Methode fügt sich in den frühen Entdeckungsprozess ein, unterstützt die Hypothesenprüfung bei der Zielvalidierung und ermöglicht die Bereitstellung von Assays für Screenings, die auf pathogenassoziierten Molekularmustern basieren.
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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026