Quantifizierung der Darmbakterienlast bei mit Vibrio cholerae infizierten Zebrafischen

0 Ansichten3:48 Min. • February 26th, 2026

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Beginnen Sie mit einem erwachsenen Zebrafisch, der mit einem antibiotikaresistenten Stamm von Vibrio cholerae infiziert ist. Dieses pathogene Bakterium exprimiert β-Galactosidase-Enzym und besiedelt den Darmtrakt.

Sammeln Sie den Fisch und geben Sie ihn in eine Lösung mit einer Überdosis Narkose, um ihn einzuschläfern.

Legen Sie den Fisch mit der Bauchseite nach oben und sichern Sie ihn mit Nadeln.

Desinfizieren Sie den Bauch, machen Sie einen längsverlaufenden Hautschnitt und zwei seitliche Einschnitte zum Kopf hin und stecken Sie dann die Haut an, um den Darmtrakt freizulegen.

Übertragen Sie den Trakt in ein Homogenisierungsrohr, das einen Kaltpuffer mit Glasperlen enthält.

Inkubieren Sie mit Bewegung, sodass die Glasperlen das Gewebe stören und die Bakterien freisetzen.

Das Homogenat in Serie verdünnen, auf das Medium verplatten und inkubieren. Das Medium enthält ein chromogenes β-Galactosidase-Substrat und ein Antibiotikum zur Beseitigung von Schadstoffen.

Die Bakterien exprimieren β-Galactosidase-Enzym, das das chromogene Substrat hydrolysiert und zur Bildung blaupigmentierter Kolonien führt.

Zählen Sie die Kolonien, um die bakterielle Darmlast abzuschätzen.

Wenn das Experiment seinen gewünschten Endpunkt erreicht hat, entnehmen Sie eine 15-Milliliter-Probe des Infektionswassers zur Diagnose. Dann sammeln Sie die Fische und entsorgen Sie das infizierte Wasser ordnungsgemäß. Orientiere die Bauchseite nach oben und sichere den Körper mit einer Nadel durch den Unterkiefer und einer weiteren Stift direkt hinter dem Anus.

Beide Pins vom Körper wegwénken. Als Nächstes wischt man die Bauchseite des Fisches mit 70 % Ethanol ab. Dann sterilisiere ein Skalpell und Vannas-Schere mit 70 % Ethanol und einer Flamme.

Machen Sie nun mit dem Skalpell einen kleinen längsförmigen Schnitt im Bauch, der die Schuppen durchdringt, aber nur so tief wie die Haut schneidet. Als Nächstes verlängern Sie mit der Schere den Schnitt vorsichtig entlang der gesamten Körperlänge, ohne tiefer als auf Hauthöhe zu schneiden. Vermeiden Sie es, den After zu schneiden.

Dann machen Sie zwei seitliche Schnitte zum Kopf hin, um die Öffnung zu erweitern. Dann steckt man die Haut auf jeder Seite der seitlichen Schnitte an der Sezierfläche fest und richtet die Nadeln nach außen, weg vom Körper. Der Darmtrakt sollte nun als sehr dünnes, blasses Rohr sichtbar sein.

Verwenden Sie nun zwei Paar flammensterilisierte Zangen, um vorsichtig den gesamten Darmtrakt zu entfernen, der sehr empfindlich sein kann. Übertragen Sie das Gewebe in ein Homogenisierungsrohr mit Glasperlen und einem Milliliter Kaltpuffer. Als Nächstes homogenisieren Sie die Gewebe wie im Textprotokoll beschrieben und quantifizieren Sie die intestinalen Besiedlungsniveaus.

Als Nächstes werden serielle Verdünnungen des Darm-Homogenats und des Puffers durchgeführt. Bereite für jeden Fisch fünf oder sechs zehnfache Verdünnungen in einem Milliliter vor. Wirbel die Röhren zum Mischen vortexen.

Anschließend werden 100 bis 200 Mikroliter jeder Verdünnung auf LB-Agarplatten mit Streptomycin und X-gal plattiert. Inkubieren Sie die Platten bei 30 Grad Celsius für 16 bis 18 Stunden. Nach der nächtlichen Brutzeit zählen Sie die V. cholerae-Kolonien auf den Platten.

Diese Bakterien bilden typischerweise blassblaue Kolonien auf LB-Medium mit X-gal.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026