Quantifizierung der bakteriellen Last im Mausherz nach der Injektion von Listeria monocytogenes in die Schwanzvene

0 Ansichten4:21 Min. • March 31st, 2026

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Nehmen Sie eine gefesselte Maus und reinigen Sie ihren Schwanz mit Alkohol, um die Kontamination an der Injektionsstelle zu verringern und die Vene zu erweitern.

Injizieren Sie Listeria monocytogenes, ein pathogenes Bakterium, in die Schwanzvene, um es direkt in den Blutkreislauf abzugeben.

Üben Sie sanften Druck an der Injektionsstelle aus, um die Blutung zu stoppen, und lassen Sie die Maus sich dann erholen.

Die injizierten Bakterien zirkulieren systemisch und erreichen das Herz. Anschließend besiedeln sie das Herz und bilden eine Infektion.

Später entnehmen Sie das mit Krankheitserregern infizierte Herz von der eingeschläferten Maus.

Homogenisiere das Herz mit einem Homogenisator, um Bakterien aus dem Gewebe freizusetzen.

Führen Sie serielle Verdünnungen des Homogenats in einer Mehrfachwellplatte durch.

Legen Sie kleine Volumina von jeder Verdünnung auf eine Agarplatte und lassen Sie sie trocknen.

Inkubieren Sie die Platte, damit die Bakterien sich vermehren und sichtbare Kolonien bilden können.

Zählen Sie die Kolonien, um die Bakterienlast im infizierten Mausherzen zu bestimmen.

Um L zu impfen. Monocytogenes in Mäuse, ein Tier in ein Geschirr zu setzen, um das Tier während der Injektion zu fesseln. Verwenden Sie eine Alkoholpolster, um die Injektionsstelle zu reinigen und die Schwanzvene zu erweitern.

Dann wird mit einer 1-Milliliter-Spritze und einer 27,5-Gauge-Nadel vorsichtig 200 Mikroliter der gewünschten Kultur in die Schwanzvene der Maus injiziert. Verwenden Sie ein Papiertuch, um etwaige Blutungen durch die Injektion zu stoppen, bevor Sie das Tier in einen frischen Käfig legen. Nach dem Opfern der Tiere bis zu 72 Stunden später, gemäß dem Textprotokoll unter dem Biosicherheitsschrank, befestigen Sie das Tier auf einem Sektionsblock und verwenden Sie 70 % Ethanol, um es zu sättigen.

Machen Sie einen Y-förmigen Schnitt am Bauch und Thorax, der sich von der Vaginalöffnung bis zum Xiphoideusfortsatz erstreckt und bis zur Achsel jedes Arms fortschreitet. Ziehen Sie die Haut zurück, entfernen Sie die Nadeln von den Beinen und verwenden Sie sie, um die Dissektion offen zu halten, wobei Sie vorsichtig durch das Peritoneum schneiden, wobei Darm, Magen, Leber und Milz freigelegt werden.

Jetzt lokalisieren Sie das Zwerchfell und schneiden Sie vorsichtig entlang des Brustkorbs, um den Thorax sichtbar zu machen. Schneiden Sie durch den Xiphoideus und das Brustbein bis zum Hals, um den Thorax zu öffnen und Herz und Lunge freizulegen. Mit einer Pinzette greifen Sie vorsichtig das Herz an der Spitze und heben es an, um Spannung in der Aorta und den Lungengefäßen zu erzeugen. Dann schneiden Sie die Gefäße, um das Herz zu befreien, und legen es in ein separates Wasserrohr.

Nach der Herstellung eines Homogenisators gemäß dem Textprotokoll homogenisiere eine Leber für mindestens zwei Minuten oder bis keine sichtbaren Organteile mehr übrig sind. Verwenden Sie eine Pinzette, um große Schmutz von der Sonde zu entfernen.

Sobald alle Organproben homogenisiert sind, bereiten Sie serielle Verdünnungen von 1 bis 10 bis 10.000 für Leber- und Milzproben sowie 1 bis 10 bis 1000 für das Herz vor. Punktverdünne die Verdünnungen auf vorgewärmte LB-Agarplatten. Unverdünnte Proben können auf separaten Platten angelegt werden, um sicherzustellen, dass die Organe ausreichend infiziert sind.

Nachdem die Platten getrocknet sind, werden sie bei 37 Grad Celsius in den Inkubator gelegt. Verwenden Sie Parafilm, um die 96-Well-Platten mit verdünnten Proben einzuwickeln und in einen Gefrierschrank bei minus 80 Grad Celsius zu legen.

Am folgenden Tag zählen Sie die Anzahl der Kolonien und verwenden Sie die Verdünnungen, um die Gesamtzahl der Bakterien pro Organ zu berechnen.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026