Bewertung der Inhibitoreffekte auf die Pellicle-Bildung bei Bacillus subtilis

0 Ansichten2:57 Min. • February 26th, 2026

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Beginnen Sie mit einer Kultur von Bacillus subtilis, einem Bodenbakterium, das in einem nährstoffreichen Medium gezüchtet wird.

Zentrifugieren Sie, um die Bakterien zu pelletieren, den Überbeugstoff zu entsorgen und dann das Pellet in einem chemisch definierten Medium zu suspendieren, das die Biofilmbildung unterstützt.

Missen Sie die optische Dichte der Kultur, um die passende bakterielle Konzentration zu bestimmen.

Geben Sie die Kultur zu Brunnen, die ein definiertes Medium für die Kontrolle und ein definiertes Medium mit einem Inhibitor für den Test enthalten.

Inkubieren Sie unter statischen Bedingungen. Die Bakterien wandern nach oben und sammeln sich an der Luft-Flüssigkeit-Grenzfläche an, wo die erhöhte Sauerstoffverfügbarkeit das Bakterienwachstum unterstützt.

Im Kontrollfeld sondern Bakterien an der Grenzfläche extrazelluläre Matrixkomponenten ab und bilden einen schwebenden Biofilm, den sogenannten Pellicle, eine Schutzschicht, die das Überleben der Bakterien fördert.

Im Testbrunnen stört der Inhibitor die Matrixsynthese, was zu verstreuten Bakterienpopulationen führt.

Dieser Test zeigt, dass Inhibitoren die Bildung von Biofilmen blockieren, was ein zentrales Merkmal der bakteriellen Pathogenese ist.

Wählen Sie zuerst eine geeignete einzelne Kolonie aus und geben Sie sie in 3 Milliliter LB-Brühe um. Setze diese Starterkultur für 4 Stunden bei 37 Grad Celsius in einen schüttelnden Brutkasten. Nach der Inkubation nehmen Sie 1,5 Milliliter der Starterkultur und zentrifugieren Sie sie für vier Minuten.

Entferne vorsichtig das Überdachungsmittel und suspendiere das Pellet dann wieder in 1,5 Millilitern MSgg-Medium. Um Pellicles zu züchten, bereiten Sie eine 12-Well-Zellkulturplatte vor, indem Sie jedem Bohrloch 3 Milliliter MSgg hinzufügen. Zu einigen dieser Brunnen sollte MSgg mit einem kleinen Molekülinhibitor in einem Konzentrationsbereich hinzugefügt werden, wodurch die Verteilung der verschiedenen Konzentrationen rund um die Schale verteilt wird, um Randeffekte zu vermeiden.

Messen Sie die optische Dichte bei 600 Nanometern der neu suspendierten Starterkultur. Die Kultur sollte zwischen 0,6 und 1 liegen. Dies ist entscheidend für die Robustheit des Systems.

Inokulieren Sie jeden Brunnen der Kulturplatte mit 3 Mikrolitern der neu suspendierten Starterkultur. Anschließend wird die Platte drei Tage lang bei 23 Grad Celsius unter statischen Bedingungen inkubiert. Anschließend nehmen Sie die Platte aus dem Inkubator und beobachten Sie die Pellikel.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026