JoVE Encyclopedia of Experiments
Mikrobiologie
0 Ansichten • 2:56 Min. • February 26th, 2026
Beginnen Sie mit einer Multiwell-Platte, die Paramecien enthält, die mit pathogenen E. coli vorinfiziert sind, die fluoreszierende Proteine exprimieren.
Fügen Sie betäubte Zebrafischlarven hinzu und co-inkubieren Sie sie unter Tageslichtbedingungen, um die natürliche Fressumgebung nachzuahmen.
Während der Inkubation erlangen die Larven wieder das Bewusstsein und jagen infizierte Paramecia.
Nach dem Verzehr werden die Paramecien verdaut und E. coli werden in den Darmtrakt freigesetzt.
Die bakterielle Besiedlung verläuft vom vorderen Darm zum hinteren Darm und ähnelt einer lebensmittelbedingten Infektion nach.
Waschen Sie die Larven anschließend in einem Medium, das mit einem Betäubungsmittel ergänzt wird, um sie wieder zu betäuben.
Anschließend werden die Larven in Agarose mit niedrigem Schmelzpunkt innerhalb einer fluoreszierenden Bildplatte platziert.
Mit einem Stereomikroskop richten Sie die Zebrafische aus und inkubieren Sie, damit die Agarose erstarren kann.
Überlagern Sie es mit einem nährstoffreichen Medium, das mit einem Anästhetikum ergänzt wird.
Mit einem Fluoreszenzmikroskop beobachten Sie die Larven auf die Verteilung von fluoreszierenden E. coli, um den Verlauf der bakteriellen Infektion zu bewerten
Bei lebensmittelbedingten Infektionen des Zebrafischs wird die Paramecia-Proben auf zwei mal zehn zu fünf Paramecia pro Milliliter E3-Konzentration verdünnt und pro Bedingung 3 Milliliter jeder Paramecia-Kultur in einen Brunnen einer 6-Well-Platte gegeben.
Als Nächstes werden 10 anästhesierte Zebrafische in jedem Brunnen in einem minimalen Flüssigkeitsvolume übertragen und die Kokulturen zwei Stunden lang bei 30 Grad Celsius in einem tagaktiven Inkubator unter Tageslicht inkubiert.
Am Ende der Brützeit werden die Zebrafische in fünf verschiedenen Brunnen mit 3 Millilitern frischem E3-Medium gewaschen, ergänzt mit 100 Milligramm pro Liter Trikain und Brunnen, und jeder Zebrafisch in 3 Milliliter 1 Prozent niedrigschmelzendem Agarose in einer schwarzwandigen 6-Well-Platte eingebettet.
Wenn alle Fische eingebettet sind, stellen Sie die Platte unter ein Stereomikroskop und verwenden Sie eine abgeschnittene Gel-Ladespitze, um sicherzustellen, dass die Köpfe links und die Schwänze rechts in jedem Sichtfeld liegen.
Warten Sie 5 Minuten, bis die Agarose fest ist, legen Sie dann den eingebetteten Fisch mit frischem E3-Medium mit Tricain auf und bilden Sie den Zebrafisch mit einem fluoreszierenden Mikroskop ab, um den Verlauf der bakteriellen Infektionen zu bewerten.
Diese Studie untersucht den Verlauf einer bakteriellen Infektion in Zebrafischembryonen nach der Aufnahme von pathogenen E. coli. Mithilfe fluoreszenzbasierter Bildgebungstechniken können Forscher die Besiedlung durch Bakterien im Darmtrakt sichtbar machen.
Diese Methode ermöglicht die mechanistische Entschärfung von Modellen gastrointestinaler Infektionen, indem die Kolonisationsdynamik von Pathogenen in einem transparenten Wirbeltiersystem sichtbar gemacht wird. Sie unterstützt die Zielvalidierung für antiinfektiöse Wirkstoffe durch eine quantitative, räumlich-zeitliche Verfolgung der bakteriellen Belastung. Der Ansatz verbindet phänotypisches Screening mit der translationsorientierten Beurteilung von Biomarkern in frühen Entdeckungsworkflows.
Positioniert das Modell in der frühen Entdeckungsphase für die Hypothesenprüfung, ermöglicht die Bereitschaft von Assays für das Screening und unterstützt die translationale Kontinuität durch visuelle Infektionsverfolgung.
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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026