JoVE Encyclopedia of Experiments
Mikrobiologie
0 Ansichten • 2:48 Min. • March 31st, 2026
Beginnen Sie mit rotem Fluorophor markiertem M. Tuberkulose-Antigene sind auf einem polymerbeschichteten Deckglitscher immobilisiert.
Füge einen Blockierungspuffer hinzu, um unspezifische Bindungsstellen zu blockieren. Waschen Sie, um überschüssigen Blocker zu entfernen.
Führen Sie das gesamte Protein ein, das aus menschlichen Makrophagen extrahiert wird, einschließlich des Zelloberflächenrezeptors von Interesse. Inkubieren.
Die Makrophagenrezeptoren binden an die immobilisierten bakteriellen Antigene.
Fügen Sie einen Quervernetzer hinzu, um die Rezeptor-Antigen-Komplexe zu stabilisieren, gefolgt von einem Abschrecker, um die nicht reagierten Quervernetzer zu neutralisieren.
Waschen Sie und fügen Sie einen zweiten Vernetzer hinzu, um die Komplexe zu verstärken.
Waschen Sie nochmal. Dann entferne ich den Deckmantel und kehre ihn über eine primäre Antikörperlösung um.
Die Antikörper binden an den interessierten Makrophagenrezeptor.
Waschen und invertieren Sie den Deckmantel über einer grünen, fluorophorkonjugierten sekundären Antikörperlösung, die an die primären Antikörper bindet.
Waschen und montieren Sie den Deckdeckel.
Visualisieren Sie die Probe unter einem Fluoreszenzmikroskop. Ko-lokalisierte rote und grüne Signale bestätigen die Wechselwirkung zwischen dem Makrophagenrezeptor und dem bakteriellen Antigen.
Mit einer rundnasigen chirurgischen Pinzette werden 12 Millimeter runde Deckel in die Vertiefungen einer 24-Wellen-Kulturplatte gelegt.
Inkubieren Sie das Deckblatt mit Mycobacterium tuberculosis Rhodamin Antigenen für 1 Stunde bei 37 Grad Celsius. Nach der Inkubation werden 100 Mikroliter Proteinextrakt in 300 Mikrolitern PBS verdünnt und 2 Stunden bei Raumtemperatur mit Rührung inkubiert. Wickle den Deckel der Kulturplatte mit Paraffinfolie ein.
Geben Sie einen 60-Mikroliter-Tropfen des zuvor getitrierten Anti-SLAMF1-Primärantikörpers auf den mit Paraffinfolie bedeckten Deckel. Entfernen Sie vorsichtig den Deckel von der Platte mit gebogen, feiner chirurgischer Pinzette und Nadeln. Nach der Inkubation mit primärer und sekundärer Antikörperlösung entfernen Sie überschüssige Flüssigkeit und montieren Sie den Deckel auf einen Tropfen Befestigungsflüssigkeit, der auf einem Glasobjektträger platziert ist. Legen Sie den Objektträger unter ein Fluoreszenzmikroskop und beobachten Sie die Zellen mit geeigneten Filtern.
Dieses Protokoll beschreibt einen fluoreszenzbasierten Assay, der darauf ausgelegt ist, die Wechselwirkungen zwischen Makrophagenrezeptoren und bakteriellen Antigenen zu untersuchen. Das Verständnis dieser Wechselwirkungen ist entscheidend, um die mikrobiologische Forschung voranzutreiben und therapeutische Strategien zu entwickeln.
Mit diesem fluoreszenzbasierten Assay lässt sich die Bindung von Makrophagenrezeptoren an bakterielle Antigene direkt visualisieren, was die Zielvalidierung in der Infektionsforschung unterstützt. Durch quantitative, bildbasierte Nachweise von Rezeptor-Antigen-Wechselwirkungen verbessert er die mechanistische Entschärfung von Risiken zu einem frühen Zeitpunkt der Entdeckungsphase. Die Methode unterstützt Go/No-Go-Entscheidungen, indem sie die biologische Relevanz von Wirt-Pathogen-Wechselwirkungen vor der Substanzenscreening bestätigt.
Der Test fügt sich in den frühen Entdeckungsprozess ein, unterstützt die Zielvalidierung vor der Identifizierung von Leitverbindungen und leitet die präklinische Strategie durch mechanistische Erkenntnisse.
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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026