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Beginnen Sie mit Epithelzellen, in denen die Expression des Interferon-Adaptorproteins, eines wichtigen Vermittlers der angeborenen Immunität, reduziert wurde, wodurch die Zellen anfälliger für Brucella-Infektionen sind.
Ersetzen Sie das Medium durch ein Infektionsmedium, das grünes fluoreszierendes Protein enthält – das Brucella abortus, einen fakultativen intrazellulären Erreger, in der gewünschten Konzentration exprimiert.
Zentrifugiere die Platte, um den Kontakt zwischen Bakterien und Wirtszellen zu fördern, und inkubiere dann, um eine bakterielle Internalisierung zu ermöglichen.
Waschen Sie die Zellen mit einem serumhaltigen Medium und behandeln Sie sie mit einem Antibiotikum, um extrazelluläre Bakterien zu eliminieren.
Inkubieren Sie weiter, damit Brucella sich intrazellulär vermehren kann.
Waschen Sie die Zellen mit einem Puffer und fixieren Sie sie mit Paraformaldehyd, um die intrazellulären Strukturen zu erhalten.
Spüle das überschüssige Fixativ ab. Anschließend wird ein mit Waschmittel ergänzter Puffer hinzugefügt, um die Zellen zu permeabilisieren.
Waschen Sie das restliche Waschmittel ab, fügen Sie dann DAPI hinzu, um die Kerne zu färben, und führen Sie eine letzte Waschung durch.
Mit einem automatisierten Mikroskop werden Hochdurchsatzbilder einer Brucella-Infektion in den Wirtsepithelzellen aufgenommen.
Mit einem automatischen Plattenscheibenreiniger wird das Transfektionsmedium durch 50 Mikroliter Infektionsmedium ausgetauscht. Im Inneren der Haube wird die Platte in den Zentrifugenkäfig übertragen und die 384-Bohrloch-Platte mit 400-fachem g und vier Grad Celsius für 20 Minuten zentrifugiert.
Anschließend wird die Platte mit Parafilm abgedichtet und auf einer vorgewärmten Aluminiumplatte bei 37 Grad Celsius und 5 %CO2 für vier Stunden befruchtet. Nach der Inkubation mit dem automatischen Plattenreiniger verwenden Sie DMEM mit 10 % FCS, das 100 Mikrogramm Gentamicin oder GM pro Milliliter enthält, um die Zellen zu waschen und extrazelluläre Bakterien zu inaktivieren. Dann verarbeite ich Parafilm, um die Platte zu versiegeln, und lege sie für weitere 40 Stunden auf die vorgewärmte Aluminiumplatte im Inkubator zurück, um den Endtest durchzuführen.
Um die Zellen zu reparieren, verwenden Sie zuerst PBS, um die Brunnen zu reinigen. Anschließend tauschen Sie das PBS gegen 50 Mikroliter 3,7 % PFA in 0,2 molaren HEPES bei pH 7,4 aus und inkubieren Sie die Zellen bei Raumtemperatur für 20 Minuten.
Nach der Inkubation verwenden Sie 50 Mikroliter PBS, um das Fixationsmedium auszutauschen. Um die Proben mit dem automatischen Plattenreiniger zu färben, beginnen Sie mit 50 Mikrolitern 0,1 % Triton X-100 in PBS für 10 Minuten, um die Zellen zu permeabilisieren.
Nach dreimaliger Reinigung von PBS geben Sie 50 Mikroliter PBS mit einem Mikrogramm DAPI pro Milliliter und inkubieren Sie 30 Minuten bei Raumtemperatur. Anschließend verwenden Sie PBS, um die Zellen dreimal zu waschen, bevor Sie sie vor Licht schützen. Übertragen Sie die Platte auf das automatisierte Mikroskop.