Detektion der bakteriellen Antibiotika-Empfindlichkeit mit einem stimulierten Raman-Streumikroskop

0 Ansichten3:46 Min. • March 31st, 2026

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Beginnen Sie mit Bakterienproben, die mit steigenden Konzentrationen eines Antibiotikums behandelt wurden, das empfängliche Bakterien eliminiert.

Fügen Sie ein Wachstumsmedium mit Deuteriumoxid und derselben Antibiotikumkonzentration in die entsprechenden Röhren hinzu.

Inkubieren Sie die Röhren unter Schüttelbedingungen.

Deuteriumoxid dringt in Bakterienzellen ein, wo Deuterium in neu synthetisierte Biomoleküle eingebaut wird und Kohlenstoff-Deuterium-Bindungen bildet.

Schleudere die Bakterien, entsorge das Supernatant und wasche.

Fügen Sie ein Fixationsmittel hinzu, um die bakterielle Struktur zu erhalten.

Füge Wasser hinzu, zentrifugiere und entferne das Supernatant.

Die Bakterien wieder aufhängen und die Suspension auf ein poly-L-Lysin-beschichtetes Deckglas übertragen, dann versiegeln Sie es.

Setzen Sie die Probe auf die Bühne eines vorkalibrierten stimulierten Raman-Streu- oder SRS-Mikroskops. Füge Wasser hinzu und senke das Ziel.

Aufnahme von Bildern mehrerer Felder, um die Schwingungsfrequenz von Kohlenstoff und Deuterium zu beurteilen.

Bei höheren Antibiotikakonzentrationen nimmt das Kohlenstoff-Deuterium-Signal ab, was auf eine verminderte bakterielle Lebensfähigkeit hinweist.

Dies ermöglicht eine schnelle Bewertung der Antibiotikumempfindlichkeit, indem die SRS-Signalintensität mit der bakteriellen Lebensfähigkeit korreliert wird.

Nach einer Stunde Inkubation werden 700 Mikroliter Antibiotika, das serienweise mit 100 % Deuteriumhaltigem MHB-Medium verdünnt wird, zu den 300 Mikrolitern vorbehandelter antibiotika in derselben Antibiotikakonzentration gegeben. Homogenisieren Sie das Gemisch, indem Sie mehrmals nach oben und unten pipettieren. Fügen Sie 700 Mikroliter antibiotikafreies, 100 % deuteriumhaltiges MHB-haltiges Medium zu 300 Mikrolitern antibiotikafreien Bakterien als positive Kontrolle hinzu.

Fügen Sie als Negativkontrolle 700 Mikroliter antibiotikafreies, deuteriumhaltiges Deuterium-haltiges MHB-Medium zu 300 Mikrolitern antibiotikafreier Bakterien hinzu. Inkubieren Sie alle Mikroröhren bei 37 Grad Celsius und 200 Umdrehungen pro Minute für 30 Minuten. Nach der Inkubation wird die 1 Milliliter antibiotika- und deuteriumbehandelte Bakterienprobe bei 6.200 x g für 5 Minuten bei 4 Grad Celsius zentrifugiert. Waschen Sie das Pellet dann zweimal mit gereinigtem Wasser. Richten Sie die Proben in einer Formalinlösung von 10 % Volumen zu Volumen und lagern Sie sie bei 4 Grad Celsius.

Für die Probenvorbereitung wird 1 Milliliter feste Bakterienlösung mit gereinigtem Wasser gewaschen und die gewaschene Bakterienlösung bei 6.200 mal g für 5 Minuten bei 4 Grad Celsius zentrifugiert.

Entfernen Sie das Supernatant und bereichern Sie die bakterielle Lösung mit sterilisiertem Wasser auf etwa 20 Mikroliter. Die bakterielle Lösung wird auf ein mit Poly-L-Lysin beschichtetes Deckglas gelegt, mit einem weiteren Deckglas eingebettet und die Probe versiegelt. Stelle die Bakterienprobe auf die Probestufe unter dem 60-fachen Wasserimmersionsziel. Beginnen Sie mit der SRS-Bildgebung der Bakterienproben. Stellen Sie sich für jede Probe mindestens drei Sichtfelder vor.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026