Name: Methoden zur Beta Cell Death vermittelt durch zytotoxische T-Lymphozyten Beurteilung (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-06-16T12:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 12 s
Description: Erfahren Sie zwei Methoden zur Beurteilung von Beta-Zelltod durch zytotoxische CD8+ T-Zellen: die Chromium-51-Freisetzungsassay und die Live-Cell-Imaging-Technik mit mitochondrialen Membranpotentialfarbstoffen.

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Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse der National Institutes of Health DK074656 und AI56374 (CEM), sowie die Juvenile Diabetes Research Foundation unterstützt.

1. Vorbereitung der Zellen <ol><li> Ziel der Zellkultur: Kultur der Maus Beta-Zell-Linien, NIT-1 und NIT-4 wurde ein zuvor beschriebenen 1,2 in DMEM mit 10% FBS, 0,02% BSA, Non-essentielle Aminosäure, 15 mM HEPES, 16.5mm ergänzt Glocose und Penicillin / Streptomycin. Für 51 Cr Kennzeichnung, Samenzellen in einem flachem Boden 96-well-Kulturplatte bei 5x10 4 Zellen / well in 200 ul Kulturmedium. Für die Mikroskopie Experimente Samenzellen in einem 8-well Lab-Tak II chambered Deckglas bei 5x10 4 pro Kammer in 500 ul Kulturmedium, und lassen Sie es 48 Stunden vor wachsen, um mit in die Zytotoxizität Experimente. </li><li> Control T-Zelllinie Kultur: Verwenden Sie die Jurkat-Zelllinie (ATCC, CD3 + Lymphozyten menschlichen Zelllinie) als negative Kontrolle. Kultur Jurkat-Zellen in RPMI1640 mit 10% FBS, 2 mM L-Glutamin, 1,5 g / L Natriumbikarbonat, 10 mM HEPES und 1,0 mM Natriumpyruvat. </li></ol> 2. Sammlung und Aktivierung von Effektorzellen autoreaktiven CD8 + T-Zellen NOD.Cg-Rag1 tm1Mom Tg (TcraAI4) 1Dvs/DvsJ [NOD-AI4a] und NOD.Cg-Rag1 tm1Mom Tg (TcrbAI4) 1Dvs/DvsJ [NOD-AI4b] wurden von The Jackson Laboratory (Bar Harbor, ME) gekauft und gezüchtet in unserer Maus Anlage. F1-Hybrid Nachkommen aus Paarungen von NOD-AI4a mit NOD-AI4b [NOD-AI4a / b] zu entwickeln Diabetes bei 3-5 Wochen alt sind. Alle Mäuse wurden in specific pathogen-free Einrichtungen untergebracht und vom zuständigen Organ der Animal Care und Verwenden Committee. <ol><li> Euthanize 3-4 Wochen alten NOD-AI4a / b Mäuse mit CO 2. </li><li> Sammeln Milz von Mäusen. Eingeschläfert Mäuse sind mit Ethanol Spray präpariert und geöffnet unter chirurgischen Kapuze. Milzen entnommen und in eiskaltem HBSS-Puffer sofort. </li><li> Sammeln Milzzellen mit einem 7 ml Glas-Homogenisator. Zwei bis drei Milzen jeweils in 5 ml kaltem HBSS gelegt und homogenisiert mit einem 7 ml Glas-Homogenisator. Homogenat wird gesammelt und bei 1200rpm zentrifugiert 5 Minuten bei 4 ° C mit einem Sorvall RT7 + Zentrifuge. Die Zellpellets werden gesammelt. </li><li> Entfernen Sie rote Blutkörperchen mit hypotonen Lösung behandelt. Pellets mit 5 ml hypotonische Lösung / Milz auf Eis für 5 Minuten behandelt, anschließend durch Zugabe eines gleichen Volumens HBSS neutralisiert. Sammeln Sie die Zellen durch Zentrifugation wie oben, und resuspendieren in 50 ml HBSS. Pass die suspendierten Zellen durch Zell-Sieb und rechnen mit einer Zählkammer mit Trypanblau-Färbung. </li><li> Zellen aktivieren. Die Zellen auf 5x10 6 / ml und aktivieren Sie mit einem 3-tägigen Kultur mit 0,1 uM AI4 Mimotop (Aminosäuresequenz YFIENYLEL) und 25 U / ml IL-2 in RPMI1640 mit 10% FBS, 2 mM L-Glutamin, 1,5 g / L Natriumbikarbonat, 10 mM HEPES und 1,0 mM Natriumpyruvat. </li></ol> 3. 51 Cr-Freisetzungs-Assay zu untersuchen, CML <ol><li> Label-Ziel-Zellen: In 51 Cr, um Zellen mit 1 Ziel uCi / Vertiefung und Kultur für 3 Stunden und 3 x waschen mit Kulturmedium. </li><li> Suspend-Effektorzellen in RPMI 1640 Medium, wie in Schritt 2.5 erwähnt, so dass das Endvolumen in jede Vertiefung gegeben ist 200 ul. </li><li> Nach dem letzten Waschen der markierten Zielzellen, fügen aktivierten Effektor-Zellen, die Zielzelle Kulturen gewünschten Effektor (E: T) Zielkennzahlen. Wir verwenden normalerweise E: T-Verhältnissen bei 0,4:1, 1:1, 2:1, 5:1, 10:1, 20:1 und 50:1. </li><li> Add frischen modifizierten RPMI 1640-Medium (siehe Schritt 2.5) bis 6 Vertiefungen der Zielzellen als eine spontane Lyse Kontrolle zu handeln. </li><li> Co-Kultur Effektor-und Zielzellen für 16 Stunden. </li><li> Sammeln Sie in 6x50 mm Lime Glasröhren Überstand </li><li> Lyse-Zellen durch Zugabe von 100 &amp;mgr; l 2% SDS und Abpipettieren sanft. </li><li> Sammeln Zelllysat in eine andere Gruppe von 6x50 mm Lime Glasröhren. </li><li> Wash Brunnen einmal mit sauberem H 2 O und fügen Sie die Wäsche nach dem Zelllysat Röhren. </li><li> Zählen Sie die Überstände und Zelllysaten mit einem Gamma-Counter. </li><li> Berechnen Sie spezifische Lyse wie folgt: <img src="files/ftp_upload/2724/2724eq1.jpg" alt="Gleichung 1"></li></ol> 4. Die Färbung von Zellen für Live Cell Imaging Unter gebräuchlichsten Mitochondrienmembranpotential Farbstoffe, TMRM am wenigsten mitochondriale Toxizität aufweist. 3 Darum wählen wir TMRM für diese Live Cell Imaging-Studien. <ol><li> Bereiten Sie eine 40 mM Lager TMRM Lösung in DMSO und bei -20 ° C. Machen Sie eine [25 nM] frischen Arbeitslösung in Phenolrot-freiem DMEM mit allen Ergänzungen für NIT-1-Zellkultur 1. </li><li> Stain Ziel NIT-1-Zellen mit TMRM 25 nM für 30 min bei 37 ° C. </li><li> Ersetzen Sie die Medien mit frischem Medium mit 5 nM TMRM die Gleichgewichtsverteilung der Farbstoff 4 aufrecht zu erhalten. </li><li> Graf aktivierten Effektor-T-Zellen AI4 mit einer Zählkammer. </li><li> Stain aktivierten Effektor-T-Zellen AI4 mit 1 ul / ml PicoGreen für5 Minuten bei Raumtemperatur und wäscht mit Phenolrot-freiem Kulturmedium 3 mal. </li></ol> 5. Bestimmung der T-Lymphozyten-vermittelte beta Zelltod mit Live Cell Imaging <ol><li> Montieren Sie den Kammern Deckglas mit bunten NIT-Zellen auf der Bühne eines Zeiss LSM 510 konfokalen Mikroskop. Entfernen Sie die Registerkarte mit einem dremmel und Gas sterilisieren chambered Glas mit Etheline Oxid. Die Bühne ist mit einem Live-Cell-Imaging Kammer, dass die Temperatur kontrolliert bei 37 ° C und 5% CO 2 mit Feuchtigkeit. Ausgerüstet ist </li><li> Add aktiviert und gefärbt T-Zellen an bestimmte Kammern bei verschiedenen E: T-Verhältnissen. </li><li> Hinzugefügt gleiche Anzahl von gefärbten Jurkat-Zellen, die Kontrolle Kammern. </li></ol> 6. Abrufen von Online-Zelle Bilder Das Mikroskop ist mit einem motorisierten Bühne, die uns immer wieder zu erwerben Bilder an verschiedenen Orten aus den gleichen oder verschiedenen Kammern automatisch über den zeitlichen Verlauf des Experiments erlaubt ausgestattet. <ol><li> Mit einem 63x Öl Objektiv nehmen Bilder im Abstand von alle 3 Minuten für eine Gesamtmenge von 300 Bildern pro Standort. </li><li> Detect TMRM Färbung mit einer Anregungswellenlänge von 543 nm und Filter-Set für die Emission 565-619 nm </li><li> Detect PicoGreen Färbung mit einer Anregung 488 nm und einem Filter-Set für Emission 500-630 nm. Das Video wurde mit Zeiss LSM-Software. </li></ol> 7. Video-Konvertierung für die Veröffentlichung <ol><li> Mit dem Zeiss LSM Software, erstellen Sie eine komprimierte Filmdatei in eine AVI-Format. </li><li> So konvertieren Sie das Video in das Format veröffentlicht, importieren Sie das Video in das Software-Paket FIJI ( <a href="http://pacific.mpi-cbg.de/wiki/index.php/Fiji">http://pacific.mpi-cbg.de/wiki/index.php/Fiji</a> ), ein ImageJ ( <a href="http://rsb.info.nih.gov/ij/">http://rsb.info. nih.gov / ij /</a> )-Verteilung, mit dem Bioformats Plugin von Loci ( <a href="http://www.loci.wisc.edu/software/bio-formats">http://www.loci.wisc.edu/software/bio-formats</a> ). </li><li> Passen Sie die Helligkeit und Kontrast zu den grünen und roten Signalen und die Frame-Rate auf 2 Bilder / Sekunde mit der Animation Optionsmenü eingestellt Gleichgewicht. </li><li> Crop das Video zu 512 x 512 Pixel und Export als unkomprimierte AVI-Datei. </li><li> Öffnen Sie diese AVI-Datei in die Software Quicktime 7 (Apple Computer, Cupertino, CA) und komprimieren und Export in die offene Video-Format H264/MPEG-4 bei 1200 kbs / Sekunde. </li></ol> 8. Repräsentative Ergebnisse: <ol><li> Ein repräsentatives Ergebnis von 51 Cr CML-Assay. Abbildung 1 zeigt ein repräsentatives Ergebnis eines CML-Assay, wo Prozent spezifische Lyse (Y-Achse) steigt mit der Effektor: Target-Verhältnis (X-Achse) erhöht. Zielzellen sind primäre Inseln aus immundefizienten NOD isoliert Rag1-/ -. Mäusen und markiert mit 51 Cr. Milzzellen aus NOD.AI4α / β transgenen Mäusen isoliert und aktiviert, wie in Schritt 2 oben beschrieben. Ziele und Effektoren wurden co-kultiviert für 16 Stunden. Prozent spezifische Lyse berechnet, wie in Schritt 3.11 als beschrieben. </li><li> Zwei Vertreter (positiven und negativen) Ergebnisse einer T-Zell-vermittelten Beta-Zell-Mitochondrienmembranpotential Verlustleistung vorgestellt werden. Die Zellen werden gefärbt und Reaktionen aufgezeichnet werden wie in den Schritten 4, 5 und 6 beschrieben, Video-Dateien wie in Schritt 7 erstellt haben. Video 1: Die Maus Beta-Zell-Linie NIT-1 gefärbt wurde die mitochondriale Membranpotential Farbstoff TMRM (Red). T-Verhältnis von 50:1: Aktiviert, autoreaktiven CD8 + T-Zell-AI4 (grün gefärbt mit PicoGreen) wurden mit diesen NIT-1-Zellen in einer E co-kultiviert. NIT-1 Mitochondrienmembranpotential allmählich während einer 400-Minuten Dauer abgeführt, sondern nur in den Clustern, die mit AI4 T-Zellen interagieren wurden. Video 2: Wie ein Kontrollexperiment, NIT-1-Zellen wurden mit TMRM und co-kultiviert mit PicoGreen gebeizt Jurkat-Zellen in einer E gefärbt: T-Verhältnis von 50:1. Jurkat-Zellen sind eine menschliche T-Zell-Linie, die MHC mismatched ist. NIT-1-Zellen aufrechterhalten mitochondrialen Membranpotentials während der gesamten Dauer des 400 Minuten Co-Inkubation. Jurkat-Zellen nicht mit NIT-1-Cluster interagieren und daher nicht dazu veranlassen, zu töten. </li></ol><img src="files/ftp_upload/2724/2724fig1.jpg" alt="Abbildung 1"> Abbildung 1 repräsentatives Ergebnis von CML Verwendung als Zielzellen primären Inseln aus immundefizienten NOD.Rag1-/ isoliert -. Mäusen und Milzzellen aus NOD.AI4α / β transgenen Mäusen. Ziele und Effektoren wurden co-kultiviert für 16 Stunden. Prozent spezifische Lyse erhöht als Effektor: Target-Verhältnis erhöht. Video 1. Maus Beta-Zell-Linie NIT-1 war der mitochondrialen Membranpotentials Farbstoff TMRM (Red) gefärbt. Aktivierte autoreaktive CD8 + T-Zell-AI4 (grün gefärbt mit PicoGreen) wurden mit diesen NIT-1-Zellen bei E co-kultiviert: T-Verhältnis von 50:1. NIT-1 Mitochondrienmembranpotential DissipationTed allmählich während einer 400-Minuten Dauer, sondern nur in den Clustern, die mit grünen AI4 T-Zellen interagieren wurden. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/2724/video.mov">Klicken Sie hier, um Video anzuschauen</a> . Video 2. NIT-1-Zellen wurden wie in Video 1 und co-kultiviert mit PicoGreen gebeizt menschliche T-Zell-Linie Jurkat beschrieben gefärbt. NIT-1-Zellen konnten Mitochondrienmembranpotential durchdacht die Dauer von 400 Minuten aufrecht zu erhalten. Jurkat-Zellen nicht mit NIT-1-Cluster interagieren und daher nicht dazu veranlassen, zu töten. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/2724/Video2.mp4">Klicken Sie hier, um Video anzuschauen</a> .

<ol><li>Hamaguchi, K., Gaskins, H. R., Leiter, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NIT-1%2C+a+pancreatic+beta-cell+line+established+from+a+transgenic+NOD%2FLt+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">NIT-1, a pancreatic beta-cell line established from a transgenic NOD/Lt mouse.</a> Diabetes. 40, 842-849 (1991).</li>
<li>Chen, J., Gusdon, A. M., Piganelli, J., Leiter, E. H., Mathews, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((mt-Nd2a+modifies+resistance+against+autoimmune+Type+1+diabetes+in+NOD+mice+at+the+level+of+the+pancreatic+beta+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">mt-Nd2a modifies resistance against autoimmune Type 1 diabetes in NOD mice at the level of the pancreatic beta cell.</a> Diabetes. , (2010).</li>
<li>Scaduto, R. C., Grotyohann, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+mitochondrial+membrane+potential+using+fluorescent+rhodamine+derivatives%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Measurement of mitochondrial membrane potential using fluorescent rhodamine derivatives.</a> Biophys J. 76, 469-477 (1999).</li>
<li>Lemasters, J. J., Ramshesh, V. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+of+mitochondrial+polarization+and+depolarization+with+cationic+fluorophores%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Imaging of mitochondrial polarization and depolarization with cationic fluorophores.</a> Methods Cell Biol. 80, 283-295 (2007).</li>
<li>Abel, M., Krokowski, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathophysiology+of+immune-mediated+%28type+1%29+diabetes+mellitus%3A+potential+for+immunotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22BioDrugs%22%5BJournal%5D)">Pathophysiology of immune-mediated (type 1) diabetes mellitus: potential for immunotherapy.</a> BioDrugs. 15, 291-301 (2001).</li>
<li>Mathews, C. E., Graser, R. T., Savinov, A., Serreze, D. V., Leiter, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unusual+resistance+of+ALR%2FLt+mouse+beta+cells+to+autoimmune+destruction%3A+role+for+beta+cell-expressed+resistance+determinants%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Unusual resistance of ALR/Lt mouse beta cells to autoimmune destruction: role for beta cell-expressed resistance determinants.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. , 235-240 (2001).</li>
<li>Szabadkai, G., Duchen, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondria+mediated+cell+death+in+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Apoptosis%22%5BJournal%5D)">Mitochondria mediated cell death in diabetes.</a> Apoptosis. 14, 1405-1423 (2009).</li>
<li>Ly, J. D., Grubb, D. R., Lawen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mitochondrial+membrane+potential+%28deltapsi%28m%29%29+in+apoptosis%3B+an+update%5BTitle%5D)+AND+%22Apoptosis%22%5BJournal%5D)">The mitochondrial membrane potential (deltapsi(m)) in apoptosis; an update.</a> Apoptosis. 8, 115-128 (2003).</li>
<li>Dudek, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytotoxic+T-cells+from+T-cell+receptor+transgenic+NOD8.3+mice+destroy+beta-cells+via+the+perforin+and+Fas+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Cytotoxic T-cells from T-cell receptor transgenic NOD8.3 mice destroy beta-cells via the perforin and Fas pathways.</a> Diabetes. 55, 2412-2418 (2006).</li>
<li>Pakala, S. V., Chivetta, M., Kelly, C. B., Katz, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+autoimmune+diabetes+the+transition+from+benign+to+pernicious+insulitis+requires+an+islet+cell+response+to+tumor+necrosis+factor+alpha%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">In autoimmune diabetes the transition from benign to pernicious insulitis requires an islet cell response to tumor necrosis factor alpha.</a> J Exp Med. 189, 1053-1062 (1999).</li>
</ol>

Tierversuche wurden in Übereinstimmung mit den Richtlinien und Vorschriften her von der University of Florida Institutional Animal Care und Verwenden Ausschusses durchgeführt.

Zytotoxische T-Zell-vermittelten beta Zelltod ist die wichtigste Pathophysiologie der T1D 5. CML-Assays mit 51 Cr Freisetzung ermöglichen es uns, den Grad der Effektor-Target-Reaktion 6 Studie. Allerdings ist der detaillierte Prozess und Wege der T-Zell-vermittelten Zelltod beta noch nicht vollständig verstanden. Da Mitochondrien entscheidend für Beta-Zell-Funktion und der Tod 7 sind, konzentrierten wir uns auf die mitochondriale Veränderungen während der visuellen CML. Mitoch...

<table border="1"><tbody><tr><th> Name des Reagenzes </th><th> Firma </th><th> Katalog-Nummer </th><th> Kommentare (optional) </th></tr><tr><td> Cr-51 </td><td> Perkin Elmer </td><td> NEZ030500IMC </td><td></td></tr><tr><td> PBS </td><td> CellGro </td><td> 21-040-60 </td><td></td></tr><tr><td> Tetramethylrhodamin Methyl Ester (TMRM) </td><td> Invitrogen </td><td> T668 </td><td></td></tr><tr><td> PicoGreen </td><td> Invitrogen </td><td> P7581 </td><td></td></tr><tr><td> AI4 Mimotop </td><td> mimotopes.com </td><td> Aminosäuresequenz: YFIENYLEL </td><td></td></tr><tr><td> IL-2 </td><td> R &amp; D </td><td> 485-MI </td><td></td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Invitrogen </td><td> 11885 </td><td></td></tr><tr><td> FBS </td><td> HyClone </td><td> SH30071.03 </td><td></td></tr><tr><td> Bovine Serum Albumin </td><td> Sigma </td><td> A8412 </td><td></td></tr><tr><td> HEPES </td><td> CellGro </td><td> 25 bis 060-Cl </td><td></td></tr><tr><td> MEM Non-Essential Amino Acids </td><td> GIBCO </td><td> 11140 </td><td></td></tr><tr><td> Penicillin / Streptomycin </td><td> Zwillinge </td><td> 400-109 </td><td></td></tr><tr><td> Phenolrot-freiem DMEM </td><td> Sigma </td><td> D5303 </td><td></td></tr><tr><td> CO2-Inkubator </td><td> Thermo Fisher </td><td> HERAcell 150i </td><td> Steril gehalten für die Zellkultur </td></tr><tr><td> Biologische Sicherheitswerkbank </td><td> Thermo Fisher </td><td> Forma 1440 </td><td></td></tr><tr><td> Einweg-Kultur Röhren, 6x50 mm Kalk-Glas </td><td> Fischer </td><td> 14 bis 958-A </td><td></td></tr><tr><td> Gamma Counter </td><td> Perkin Elmer </td><td> Wizard 1470 Automatic Gamma Counter </td><td></td></tr><tr><td> Konfokalen Mikroskop </td><td> Zeiss </td><td> LSM 510 Meta Confocal </td><td> Mit motorisierten Bühne und Live-Cell-Kammer </td></tr><tr><td> Pipette (1 ml, 200 ul, 20 &amp;mgr; l, 10 &amp;mgr; l, 2μl) </td><td> Eppendorf </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Tubes (Amber) </td><td> Fischer </td><td> 50819772 </td><td></td></tr><tr><td> Zentrifuge </td><td> Sorvall Legend RT + </td><td> 75004377 </td><td></td></tr><tr><td> Hämazytometer </td><td> Fisher Scientific </td><td> 267110 </td><td></td></tr><tr><td> Aufrechte Mikroskope </td><td> Zeiss </td><td> Axioskop40 </td><td></td></tr><tr><td> NOD.Cg-Rag1 tm1Mom Tg (TcraAI4) 1Dvs/DvsJ Mäuse </td><td> The Jackson Laboratory </td><td> 004347 </td><td></td></tr><tr><td> NOD.Cg-Rag1 tm1Mom Tg (TcrbAI4) 1Dvs/DvsJ Mäuse </td><td> The Jackson Laboratory </td><td> 004348 </td><td></td></tr><tr><td> NOD-AI4α / β F1-Mäusen </td><td> N / A </td><td> N / A </td><td> Gezüchtet in UF Tierhaltung </td></tr></tbody></table>

methoden zur beta cell death vermittelt durch zytotoxische t-lymphozyten beurteilung

Methods to Assess Beta Cell Death Mediated by Cytotoxic T Lymphocytes

Typ 1 Diabetes (T1D) ist eine T-Zell-vermittelten Autoimmunerkrankungen. Während der Pathogenese, werden Patienten zunehmend insulinopenic als Insulin-Produktion ist verloren, vermutlich Dies ergibt sich aus der Zerstörung der Betazellen des Pankreas durch T-Zellen. Das Verständnis der Mechanismen der Beta-Zell Tod während der Entwicklung von T1D liefert Einblicke in ein wirksames Heilmittel für diese Krankheit zu erzeugen. Zell-vermittelten Lymphozytotoxizität (CML)-Assays haben in der Vergangenheit das Radionuklid Chromium 51 (51 Cr) verwendet werden, um Zielzellen Etikett. Diese Ziele werden dann zu Effektor-Zellen ausgesetzt und die Freisetzung von 51 Cr von Zielzellen ist als ein Hinweis auf Lymphozyten-vermittelten Zelltod zu lesen. Inhibitoren der Zelltod führen zu einer verminderten Freisetzung von 51 Cr. Als Effektorzellen, haben wir eine aktivierte autoreaktive klonale Population von CD8 + zytotoxischen T-Lymphozyten (CTL) aus einer Maus Lager transgenen sowohl für die alpha-und beta-Ketten des AI4 T-Zell-Rezeptor (TCR) isoliert. Aktiviert AI4 T-Zellen wurden mit 51 Cr markierten Target NIT-Zellen für 16 Stunden ko-kultiviert, die Freisetzung von 51 Cr wurde aufgezeichnet, um spezifische Lyse berechnet Mitochondrien in vielen wichtigen physiologischen Ereignisse, wie die Energieproduktion, die Regulierung der Signalweiterleitung und Apoptose beteiligt. Das Studium der Beta-Zell-Mitochondrien funktionelle Veränderungen bei der Entwicklung von T1D ist ein neuartiges Gebiet der Forschung. Mit der mitochondrialen Membranpotentials Farbstoff Tetramethylrhodamin Methyl Ester (TMRM) und konfokale Mikroskop live cell imaging, verfolgten wir Mitochondrienmembranpotential im Laufe der Zeit in der Beta-Zell-Linie NIT-1. Für die Bildgebung Studien wurden Effektor AI4 T-Zellen mit dem fluoreszierenden Farbstoff Kernfärbung PicoGreen gekennzeichnet. NIT-1-Zellen und T-Zellen wurden in Kammern Deckglas co-kultiviert und montiert auf dem Mikroskoptisch mit einer lebenden Zelle Kammer ausgestattet, kontrolliert bei 37 ° C, mit 5% CO 2, und befeuchtet. Bei diesen Experimenten Bilder wurden von jedem Cluster alle 3 Minuten für 400 Minuten gedauert. Über einen Zeitraum von 400 Minuten, beobachteten wir die Ableitung der mitochondrialen Membranpotentials in NIT-1-Zell-Cluster, wo AI4 T-Zellen wurden angebracht. In der gleichzeitigen Steuerung Experiment, bei dem NIT-1-Zellen mit MHC wurden co-kultivierten mis-abgestimmt menschliche Lymphozyten Jurkat-Zellen, blieb Mitochondrienmembranpotential intakt. Diese Technik kann verwendet werden, um Änderungen in Echtzeit in mitochondrialen Membranpotentials in Zellen unter Beschuss von zytotoxischen Lymphozyten, Zytokinen oder anderen zytotoxischen Reagenzien zu beobachten.

Zell-vermittelten Lymphozytotoxizität (CML)-Assays können verwendet werden, um autoreaktive Reaktionen und Studium Mechanismen des Zelltods in vitro zu testen. Allerdings kann die Verwendung lebender Zellen konfokale mikroskopische Bildgebung mit Fluoreszenzfarbstoffen, die Art und Kinetik der Zelltod als auch die Wege genutzt näher untersucht werden.

Methoden zur Beta Cell Death vermittelt durch zytotoxische T-Lymphozyten Beurteilung

Typ-1-Diabetes (T1D) ist eine T-Zell-vermittelte Autoimmunerkrankung. Im Verlauf der Pathogenese werden die Patienten zunehmend insulinopenischer, da Insulin ...

Typ-1-Diabetes ist eine Autoimmunerkrankung, bei der insulinproduzierende pankreatische Beta-Zellen durch autoreaktive T-Zellen zerstört werden. Das Verständnis der beteiligten Mechanismen wird Einblicke liefern, um eine wirksame Heilung für diese Erkrankung zu entwickeln. Hier werden zwei Methoden gezeigt, um die spezifische, von CD8-positiven T-Zellen vermittelte Zerstörung pankreatischer Beta-Zellen in vitro zu beobachten: ein auf Chrom-51 basierender zellvermittelter lymphozytärer Zytotoxizitäts- oder CML-Test und ein visueller CML-Test für beide Methoden.CD8-positive T-Effektorzellen werden zunächst aus Mäusenmilzen gewonnen, um einen CML-Assay durchzuführen. Ziel-Beta-Zellen vom Typ „Knit one“ oder „Knit four“ werden mit Chrom 51 markiert und gemeinsam mit Effektorzellen kultiviert. Wenn die Ziel-Beta-Zellen abgetötet werden, wird das Chrom 51 freigesetzt. Anschließend werden die Überstände und Zelllysate gesammelt, und die Radioaktivitätslevel – die das Ausmaß des Zelltods anzeigen – mithilfe eines Gammazählers gemessen, um einen visuellen CML-Assay durchzuführen. Ziel-Beta-Zellen vom Typ „Knit one“ und „Knit four“ werden mit dem mitochondriellen Potenzialfarbstoff TM RM markiert, Effektorzellen mit Pico Green.Die Zellen werden kombiniert und eine Live-Cell-Bildgebung wird durchgeführt, um die Rate des Zelltods zu untersuchen, die durch die Aufhebung des mitochondrialen Membranpotentials angezeigt wird. Der Hauptvorteil dieses Assays gegenüber herkömmlichen Assays wie dem Chromfreisetzungs-Assay besteht darin, dass wir den Betazelltod in Echtzeit beobachten können. Weitere Vorteile umfassen die Möglichkeit, zu bestimmen, ob der durch CD8+-T-Zellen vermittelte Tod von Betazellen kontaktabhängig ist, und außerdem kann dieser Assay unter Verwendung fluoreszierender Indikatoren erweitert werden, um die Signalwege des Betazelltods aufzuklären.Diese Methode kann zentrale Fragen zur Pathogenese jeder Erkrankung beantworten, an der zytotoxische T-Zellen beteiligt sind. Die Bedeutung dieser Technik reicht bis in die Therapie und möglicherweise auch in die Diagnostik, da die mitochondriale Funktion sowohl für das Überleben als auch für die Physiologie von Beta-Zellen unerlässlich ist. Jing Chen und ich werden dieses Verfahren demonstrieren.Die in dieser Demonstration verwendeten Zielzellen sind die Maus-Betazelllinien knit one und knit four; die CD3-positive humane Lymphozytenzelllinie, die keine Maus-Betazellen erkennt und abtötet, dient als negativer Kontroll- und Effektorzellenansatz. Die verwendeten Effektorzellen sind autoreaktive CD8-positive T-Zellen, die aus den Milzen von drei bis vier Wochen alten NOD AI4αβ F1-Mäusen gewonnen wurden. Um die Zellen zu erhalten, beginnen Sie damit, die Milzen in einen 7-Milliliter-Glashomogenisator zu geben, der 5 Milliliter eiskaltes HBSS enthält. Homogenisieren Sie die Milzen mithilfe eines Dounce-Homogenisators. Überführen Sie dann die Zellsuspension in ein kegelförmiges Reagenzglas und zentrifugieren Sie fünf Minuten bei 250 × g. Nach der Zentrifugation entsorgen Sie den Überstand. Um die roten Blutkörperchen zu entfernen, resuspendieren Sie das Pellet in je 5 Milliliter hypotonischer Lösung pro Milz. Inkubieren Sie fünf Minuten auf Eis.Nach der Inkubation das Zellpellet zweimal mit 10 Milliliter eiskaltem HBSS waschen und zwischen den Waschschritten die Zellen durch Zentrifugation resuspendieren. Die Zellsuspension zwischen den einzelnen Waschungen durch erneutes Auftragen von 10 Milliliter eiskaltem HBSS resuspendieren. Anschließend die Zellen mit einem Hämozytometer zählen, nachdem die Zellzahlen bestimmt wurden.Zentrifugieren Sie erneut, resuspendieren Sie die Zellen dann in supplementiertem RPMI 1640 mit einer Dichte von fünf mal 10 hoch sechs Zellen pro Milliliter und säen Sie die Zellen mit einer Dichte von fünf mal 10 hoch sechs pro Milliliter in eine T-75-Flasche aus. Um die Zellen schließlich zu aktivieren, geben Sie AI vier myope und IL zwei in die Flasche, um Endkonzentrationen von 0,1 Mikromolar bzw. 25 Einheiten pro Milliliter zu erreichen, und inkubieren Sie die Flasche drei Tage lang in einem 5 % CO2-Inkubator bei 37 Grad Celsius. Die aktivierten Zellen können nun entweder für einen ACROMIUM-51-basierten CML-Assay oder einen visuellen CML-Assay verwendet werden.Der zellvermittelte lymphozytäre Zytotoxizitäts- oder CML-Assay verwendet hier die Freisetzung von Chrom 51 aus Zielzellen als Indikator für CD8-vermittelten Betazelluntergang. Um KNIT1- oder KNIT4-Zielbetazellen mit Chrom 51 zu markieren, säen Sie diese zunächst mit einer Dichte von 5 × 10⁴ Zellen pro Vertiefung einer 96-Loch-Platte in 200 µL supplementiertem DMEM aus und inkubieren Sie 24 Stunden bei 37 °C und 5 % CO2. Verdünnen Sie am nächsten Tag Chrom 51 in supplementiertem DMEM auf eine Konzentration von 1 Mikrocurie pro 20 µL.Fügen Sie anschließend 20 Mikroliter des verdünnten Chrom 51 in jede Vertiefung mit den Ziel-Beta-Zellen hinzu, um ein Mikrocurie pro Vertiefung zu erreichen. Stellen Sie die Platte in einen befeuchteten Inkubator bei 37 Grad Celsius mit 5 % CO2 und inkubieren Sie drei Stunden lang. Danach das Medium abziehen und die Zellen dreimal mit frischem Kulturmedium waschen.Fügen Sie anschließend Medium zu den aktivierten CD8-positiven Effektorzellen hinzu, sodass das endgültige Volumen, das jeder Vertiefung zugegeben wird, 200 Mikroliter beträgt. Kombinieren Sie die Effektor- mit den Ziel-Betazellkulturen in gewünschten Effektor-zu-Target-Verhältnissen (E:T-Verhältnisse); hier werden Verhältnisse von 20:1, 10:1, 5:1, 2:1, 1:1 und 0,25:1 verwendet, um Spontanlyse-Kontrollen vorzubereiten. Geben Sie frisches Medium in sechs Vertiefungen mit Ziel-Betazellen.Bringen Sie dann die Platte in den Inkubator und kultivieren Sie Effektor- und Zielzellen 16 Stunden lang gemeinsam. Am nächsten Tag übertragen Sie mit einer Mehrkanalpipette den Überstand auf sechs 50-Millimeter-Kalkglasküvetten. Geben Sie anschließend zur Lyse der Zellen hundert Mikroliter 2 %iger SDS-Lösung in die Platte und pipettieren Sie mehrmals vorsichtig auf und ab.Überführen Sie das Zelllysat in einen neuen Satz von sechs 50-Millimeter-Kalkglasküvetten. Um sicherzustellen, dass das gesamte Zelllysat gesammelt wird, pipettieren Sie hundert Mikroliter sterilem Wasser mehrmals auf und ab in jedes Loch und geben Sie es zu den Zelllysatgefäßen hinzu, um den Grad der Betazellzerstörung zu bestimmen. Messen Sie die Radioaktivität im Überstand und im Lysat mithilfe eines Gammazählers, nachdem die Zählungen durchgeführt wurden.Bestimmen Sie die spezifische Lyse, indem Sie den Prozentsatz der Zählraten in den Supernatanten der spontanen Lyse-Kontrolle von dem Prozentsatz der Zählraten in den experimentellen Supernatanten subtrahieren, wie in dieser Gleichung dargestellt. Um die T-Zell-vermittelte Betazelllyse in Echtzeit zu untersuchen, wird das mitochondriale Membranpotential mittels Live-Cell-Imaging von Ziel- und Effektor-Zell-Kokulturen überwacht.Um die Vorbereitung für die Mikroskopie durchzuführen, betrachten Sie die Ziel-Betazellen auf modifiziertem und sterilisiertem acht-Well-Kammer-Deckglas, wobei fünf mal 10 der vierten Zellen verwendet wurden. Stellen Sie die Objektträger in einen Inkubator bei 37 Grad Celsius und 5 % CO2 und lassen Sie die Zellen 48 Stunden lang wachsen. Am Tag des Experiments geben Sie den Farbstoff für das mitochondriale Membranpotenzial, Tetraethylrhodaminmethylester (TMRM), in einer Konzentration von 25 Nanomolar sowie phenolrotfreies ergänztes DMEM hinzu und inkubieren 30 Minuten lang.Nachdem die Zellen mit TMRM gefärbt wurden, ersetzen Sie das Medium durch frisches Medium, das fünf Nanomolar TM RM enthält, um die Gleichgewichtsverteilung des Farbstoffs aufrechtzuerhalten. Zählen Sie anschließend die aktivierten Effektor-AI-vier-T-Zellen oder die Kontroll-Jerk-it-Zellen mithilfe eines Hämocytometers und resuspendieren Sie die Zellen in phenolrotfreiem, supplementiertem DMEM in 15-Milliliter-konischen Röhrchen in der geeigneten Konzentration. Fügen Sie danach Pico Green zu den aktivierten Effektorzellen oder den Jerk-it-Kontrollzellen bis zu einer Endkonzentration von einem Mikroliter pro Milliliter hinzu.Wickeln Sie das Röhrchen in Aluminiumfolie ein, um es vor Licht zu schützen, und inkubieren Sie es anschließend fünf Minuten bei Raumtemperatur. Waschen Sie die Zellen dreimal, indem Sie phenolrotfreies DMEM hinzufügen, kurz mischen und fünf Minuten bei 250 ×g zentrifugieren. Um die Zellen zur Bildgebung zu sammeln, stellen Sie die Kammerobjektträger auf den Objekttisch eines konfokalen Mikroskops, das mit einem motorisierten Objekttisch und einer befeuchteten Live-Cell-Bildgebungskammer bei 37 Grad Celsius und 5 % CO2 ausgestattet ist.Fügen Sie die aktivierten, mit Pico Green gefärbten Effektorzellen den Kammern im hier zu untersuchenden Effektor-zu-Target-Verhältnis hinzu. Das abgebildete ET-Verhältnis beträgt 50:1. Richten Sie die Bildaufnahmesoftware so ein, dass sie in vier Vertiefungen jeweils an drei Positionen alle drei Minuten Bilder aufnimmt, mit 300 Bildern pro Position und Anregung unter Verwendung der geeigneten Filterkombinationen für TMRM und Pico Green. Sobald alle Bilder aufgenommen wurden, müssen sie hier für die Veröffentlichung konvertiert werden.Fiji und ImageJ werden mit einem Bio-Formats-Plugin von LOCI verwendet. Weitere Einzelheiten zur Video-Konvertierung finden sich im begleitenden Text. Ein zellvermittelter lymphozytärer Zytotoxizitäts- oder CML-Test wurde unter Verwendung von Chrom 51 wie in diesem Video beschrieben durchgeführt.Wie hier gezeigt, nimmt die prozentuale spezifische Lyse, dargestellt auf der Y-Achse, mit steigendem Effektor-zu-Target-Verhältnis, dargestellt auf der X-Achse, zu. Um Zelltod mittels Live-Cell-Imaging zu bewerten, wurde die murine Beta-Zelllinie KNIT-1 mit dem Farbstoff TMRM zur Markierung des mitochondrialen Membranpotentials, dargestellt in Rot, gefärbt. Aktivierte autoreaktive I4 CD8-positive T-Zellen wurden grün mit Pico Green gefärbt, und die beiden Zelltypen wurden im E:T-Verhältnis von 50:1 gemeinsam kultiviert. Wie hier zu sehen ist, nahm das mitochondriale Membranpotential von KNIT-1 über einen Zeitraum von 400 Minuten allmählich ab, und zwar ausschließlich in den Zellclustern, die mit grünen I4-T-Zellen interagierten. Als Kontrollexperiment wurden gefärbte KNIT-1-Zellen stattdessen mit Pico-Grün-gefärbten, MHC-unverträglichen menschlichen Jurkat-T-Zellen kultiviert, wie hier dargestellt. Knit-one-Zellen konnten während der gesamten Dauer von 400 Minuten das mitochondriale Membranpotenzial aufrechterhalten. Circuit-Zellen interagierten nicht mit Knit-one-Clustern und induzierten daher keinen Zelltod. Einmal gemeistert.Diese Technik dauert einschließlich der Zellvorbereitung etwa fünf Tage. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie sich das Membranpotenzial von Beta-Zellen verändert, wenn sie von autoreaktiven T-Zellen angegriffen werden. Vergessen Sie nicht, dass die Arbeit mit Radioisotopen gefährlich sein kann und dass die entsprechende Ausbildung absolviert und Vorsichtsmaßnahmen getroffen werden sollten, während Sie dieses Verfahren durchführen.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

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