CRISPR-Verkettungs-vermittelter Knockout mehrerer Gene: Eine Technik zum gleichzeitigen Ausschalten mehrerer Gene durch einen nicht-homologen End-Joining-Signalweg in Darmzellen von Mäusen

0 Ansichten4:13 Min. • July 8th, 2025

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Um mehrere Gene gleichzeitig mit dem CRISPR-Verkettungs-Cas9-System auszuschalten, beginnen Sie mit einem Röhrchen mit der Suspension der Darmzellsuspension der Maus. Ergänzen Sie das Röhrchen mit CRISPR-Verkettungsvektoren, die die Expressionskassette für mehrere nebeneinander integrierte Guide-RNAs oder gRNAs enthalten.

Jede gRNA-Kassette ist individuell so konzipiert, dass sie das vorgesehene Gen individuell ausschaltet. Fügen Sie Expressionsvektoren, die für Cas9-Endonuklease kodieren, in dasselbe Röhrchen hinzu. Elektropopolieren Sie das Zell-Plasmid-Gemisch - eine Technik, die elektrischen Strom verwendet, um den Eintritt von Plasmiden in die Zelle zu erleichtern. Im Inneren der Zelle bildet die Co-Expression des CRISPR-Konkatemers und des Cas9-Vektors gRNA-Sequenzen bzw. Cas9-Nukleasen.

Jede gRNA-Sequenz bindet an das entsprechende Cas9-Enzym und bildet mehrere Cas9-gRNA-Komplexe, die an die Zielstellen im Wirtsgenom binden. Diese Bindung aktiviert das Cas9-Enzym, das eine Kerbe in beiden DNA-Strängen stromaufwärts zur Protospacer-Nachbarmotivstelle (PAM) erzeugt. Dies führt zu einem Doppelstrangbruch (DSB) in der Ziel-DNA.

In Ermangelung einer homologen Sequenz zum Zielgen wird der endogene Reparaturmechanismus der Zelle, die sogenannte nicht-homologe Endverbindung, ausgelöst, wodurch die Reparaturproteine und Kinasemoleküle an der Bruchstelle binden können. Später repariert das Ligase-Enzym das DSB, was zu Veränderungen der Zielgensequenz führt. Diese Modifikationen stören die Funktion der Gene, was zu einem Knockout mehrerer Gene führt.

Beginnen Sie dieses Verfahren, indem Sie 9 Milliliter reduziertes Serummedium in das 15-Milliliter-Röhrchen mit der Zellsuspension geben und 3 Minuten lang bei Raumtemperatur bei 400 g zentrifugieren. Entfernen Sie den gesamten Überstand und suspendieren Sie das Pellet in einer Elektroporationslösung. Geben Sie eine Gesamtmenge von 10 Mikrogramm DNA in zwei neue Röhrchen. Fügen Sie dann Elektroporationslösung zu einem Endvolumen von 100 Mikrolitern hinzu und halten Sie das Zell-DNA-Gemisch auf Eis.

Übertragen Sie das Zell-DNA-Gemisch in die Elektroporationsküvette. Legen Sie die Küvette in die Elektroporatorkammer. Messen Sie die Impedanz, indem Sie den entsprechenden Knopf am Elektroporator drücken, und stellen Sie sicher, dass sie 0,030 bis 0,055 Ohm beträgt. Führen Sie die Elektroporation gemäß den im Textprotokoll angegebenen Einstellungen durch. Geben Sie 400 Mikroliter Elektroporationspuffer plus ROCK-Inhibitor in die Küvette und geben Sie dann den gesamten Inhalt in ein 1,5-Milliliter-Röhrchen.

30 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren, damit sich die Zellen erholen können. Nach 30 Minuten bei 400 g 3 Minuten bei Raumtemperatur drehen. Entfernen Sie den Überstand und resuspendieren Sie das Pellet in 20 Mikrolitern pro Vertiefung der Kellermatrix. Aussaat von ca. 1 x 104 bis 1 x 105 Zellen pro Well in einer 48-Well-Platte und Zugabe von EGF plus Noggin GSK-3-Inhibitor, ROCK-Inhibitor und 1,25 % Dimethylsulfoxid-Medium. Inkubieren bei 37 Grad Celsius.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026