Proteinreinigung auf Basis der Anionenaustauschchromatographie: Eine Trenntechnik zur Isolierung eines Proteins von Interesse aus dialysiertem bakteriellem Lysat auf der Grundlage der Nettoladung

0 Ansichten2:59 Min. • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Für die Anionenaustauschchromatographie-Trennung eines interessierenden Proteins von einem dialysierten bakteriellen Proteinlysat fügen Sie einen Bindungspuffer hinzu, um die Lysatviskosität zu verringern und zu verhindern, dass die chromatographische Säule verstopft wird.

Die Chelatbildner im Puffer binden zweiwertige Kationen, hemmen die Proteaseaktivität und verhindern den Proteinabbau. Darüber hinaus bewirkt der Puffer mit einem pH-Wert über dem isoelektrischen Punkt des Zielproteins, pI, dem pH-Wert, bei dem das Protein keine Nettoladung hat, dass die überschüssigen negativ geladenen Hydroxylionen die positiv geladenen Amingruppen des Proteins neutralisieren, wodurch die Oberfläche des Proteins negativ geladen wird.

Bauen Sie die Anionenaustauschchromatographiesäule zusammen, die eine vernetzte, stationäre Phase auf Agarosebasis mit positiv geladenen quartären Amingruppen enthält. Fügen Sie den Bindungspuffer hinzu, um die Säule für eine maximale Proteininteraktion während der Probenbeladung vorzubereiten. Laden Sie das verdünnte bakterielle Lysat.

Die negativ geladenen Zielproteine binden fester an die positiv geladenen Gruppen in der Säule als weniger negativ geladene Proteine.

Lassen Sie den Bindungspuffer laufen, um ungebundene positiv geladene Proteine aus der Säule zu entfernen. Führen Sie einen Elutionspuffer durch die Säule und erhöhen Sie die Salzkonzentration allmählich. Bei niedrigen Salzkonzentrationen konkurrieren negative Ionen mit schwach gebundenen Proteinen um die Bindung an die Säule, was zu deren Elution führt.

Anschließend verdrängt der Puffer mit hoher Salzkonzentration fest gebundene Proteine von Interesse mit einer längeren Retentionszeit und eluiert die Zielproteine. Die gesammelten Zielproteine können für die weitere Analyse verwendet werden.

Starten Sie den FPLC mit allgemeiner Wartung. Verbinden Sie die Säulenpuffer AIEX-A und AIEX-B mit den Pufferventilen und die mit Anionenaustauscherharz enthaltende Säule mit den Säulenanschlüssen des FPLC. Passen Sie die allgemeinen chromatographischen Parameter entsprechend an.

Starten Sie das AIEX-Programm in der FPLC-Software und wählen Sie das Äquilibrierungsvolumen für Puffer A. Laden Sie anschließend die Probe auf die Säule und eluieren Sie die Proteine mit einem linearen Gradienten von 0 % bis 100 % Puffer mit hohem Salzgehalt. Sammeln Sie 2-Milliliter-Fraktionen während der Elution.

Analysieren Sie die eluierten Fraktionen nach Beendigung des Laufs.

08:01

LERLIC-MS / MS für eingehende Charakterisierung und Quantifizierung von Glutamin und Asparagin Desamidierung in Shotgun Proteomics

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

08:44

Isolierung der F1-ATPase aus der parasitären protiste Trypanosomen Trypanosomen

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

10:41

Ionenaustausch-Chromatographie (IEX) gekoppelt an Multiwinkel Lichtstreuung (MALS) für Protein Trennung und Charakterisierung

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

10:21

Automatisierte Hydrophobe Interaktions-Chromatographie Spaltenauswahl für den Einsatz in Protein Purification

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

03:28

Selektive Aufreinigung eines bakteriellen Proteins durch negative Ionenaustauschchromatographie

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

02:54

Eine Affinitätschromatographietechnik zur Reinigung eines rekombinanten bakteriellen Proteins

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

03:54

Proteinreinigung auf Basis der Nickel-Affinitätschromatographie: Eine Technik zur Aufreinigung von Polyhistidin-markierten rekombinanten Proteinen aus bakteriellem Zelllysat

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

03:33

Kationenaustauschchromatographie: Eine Technik zur Isolierung von rekombinantem Zielprotein aus Insektenzelllysat basierend auf der Nettooberflächenladung

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

14:25

Methode für effiziente Umfaltung und Reinigung des Chemorezeptor-Liganden-bindende Domäne

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

07:19

Affinitätsreinigung eines 6X-His-markierten Proteins mit einem schnellen Protein-Flüssigchromatographie-System

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026