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Das DFE- oder DsRed-2F5-Epitop ist ein rekombinantes Fusionsprotein, das aus DsRed, einem fluoreszierenden Protein, und dem 2F5-Epitop - einem Segment des HIV-1-Hüllglykoprotein-Antigens - besteht. Dieses Epitop hat eine hohe Affinität zu seinem Paratop - einer Region in der komplementären bestimmenden Region auf dem monoklonalen 2F5-Antikörper.
Um monoklonale 2F5-Antikörper aus einer Rohprobe zu reinigen, entnehmen Sie eine Säule, die mit porösen Harzkügelchen gefüllt ist, die immobilisierte DFE-Affinitätsliganden auf ihrer Oberfläche enthalten. Spülen Sie die Säule mit einem geeigneten Äquilibrierungspuffer, um den pH-Wert zu halten und unspezifische Wechselwirkungen zwischen den Probenkomponenten und dem Harz in den nachfolgenden Schritten zu verhindern.
Laden Sie die Probe mit den monoklonalen 2F5-Zielantikörpern in die Säule. Nach und nach beginnen die Antikörper in der Probe durch die Säule oder die stationäre Phase zu fließen.
Während des Flusses interagieren die Antikörper reversibel mit den DFE-Affinitätsliganden, die in der stationären Phase immobilisiert sind. Bei diesen Wechselwirkungen bindet das Paratop auf dem 2F5-Antikörper spezifisch an sein komplementäres Epitop auf dem DFE-Liganden.
Waschen Sie die Säule mit einem Äquilibrierungspuffer, um unerwünschte Proben zu entfernen, die unspezifisch an die Säule gebunden sind. Übergeben Sie einen Elutionspuffer durch die Spalte.
Die hohe Ionenstärke des Puffers destabilisiert die Wechselwirkungen zwischen den DFE-Liganden und den monoklonalen 2F5-Antikörpern. Folglich eluieren die monoklonalen Antikörper als Fraktionen aus der Säule.
Sammeln Sie die gereinigten Antikörperfraktionen und lagern Sie sie für nachgelagerte Anwendungen.
Bereiten Sie zunächst 100 Milliliter entweder des geklärten Pflanzenextrakts mit 2F5 oder des Überstands aus dem bevorzugten zellbasierten Expressionssystem her, der ebenfalls 2F5 enthält. Bereiten Sie als Nächstes den Äquilibrierungspuffer und den Elutionspuffer mit hoher Ionenstärke vor, wie im Textprotokoll beschrieben. Spülen Sie das Chromatographiesystem mit den Puffern.
Montieren Sie eine DFE-Affinitätssäule an das Chromatographiesystem und äquilibrieren Sie mit 5 CV Äquilibrierungspuffer bei einer Flussrate von 1 Milliliter pro Minute. Überwachen Sie die UV-Absorption bei 280 Nanometern. Laden Sie dann 80 Milliliter entweder des geklärten Pflanzenextrakts oder des Überstands mit einer Durchflussrate von 0,5 Millilitern pro Minute auf die Säule, um eine Kontaktzeit von 2 Minuten zu gewährleisten. Sammeln Sie die Durchflussproben in 2-Milliliter-Fraktionen für die Rekonstruktion der Durchbruchskurve.
Lagern Sie die Durchflussproben bei 4 Grad Celsius, wenn eine sofortige Probenanalyse nicht möglich ist. Waschen Sie danach die Säule mit 6 CVs Äquilibrierungspuffer. Entnehmen Sie eine Probe zu Beginn, in der Mitte und am Ende der Wäsche. Eluieren Sie den mAb 2F5 mit 5 Volumina Elutionspuffer mit hoher Ionenstärke. Erfassen Sie die DFE-Fraktion, wenn das UV-Signal bei 280 Nanometern auf 5 Milliabsorptionseinheiten über der Basislinie angestiegen ist.