Humanisierter Mediator-Enzym-Freisetzungsassay: Eine immunchemische Methode zum Screening des allergischen Potenzials von Testantigenen durch Überwachung der Basophilen-Degranulationsreaktion in vitro

0 Ansichten5:39 Min. • July 8th, 2025

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Wenn sie einem Allergen - einem nicht-pathogenen Antigen - ausgesetzt sind, verarbeiten antigenpräsentierende Zellen das Allergen und präsentieren es den Typ-2-Helfer-T-Lymphozyten. Diese T-Lymphozyten veranlassen B-Lymphozyten, sich zu Plasmazellen zu differenzieren und Immunglobulin E, IgE-Antikörper zu produzieren, die an hochaffine IgE-spezifische Fc-Rezeptoren auf der Oberfläche zirkulierender Basophiler binden - granuläre sekretorische Zellen.

Bei nachfolgender Exposition gegenüber dem Allergen erkennen und vernetzen sich die IgE-Fc-Komplexe mit dem Allergen, wodurch Basophile aktiviert werden, um Granulate freizusetzen, die Mediatoren wie Zytokine und lysosomale Enzyme einschließlich β-Hexosaminidase enthalten, was eine starke Entzündungsreaktion hervorruft.

Um das allergische Potenzial eines Testantigens in vitro zu screenen, beginnen Sie mit einer Suspension transduzierter krebsartiger Basophiler bei Ratten, die humane IgE-spezifische Fc-Rezeptoren exprimieren. Mit IgE-haltigem Humanserum von einem allergischen Spender behandeln. Die IgE-Antikörper binden an die basophilen Fc-Rezeptoren und sensibilisieren sie.

Als nächstes fügen Sie den sensibilisierten Basophilen Puffer und eine ausreichende Menge an Testantigen hinzu. Das Antigen vernetzt sich je nach seiner Affinität zu IgE, das an Fc-Rezeptoren gebunden ist, mit den Antikörpern und leitet die basophile Degranulation ein, wobei Mediatoren wie β-Hexosaminidase in die Lösung freigesetzt werden.

Die Lösung wird in eine frische Multi-Well-Platte gegeben, die ein fluorogenes Substrat aus β-Hexosaminidase enthält, und inkubiert. β-Hexosaminidase hydrolysiert das Substrat und erzeugt ein fluoreszierendes Produkt. Fügen Sie nach der Inkubation einen Puffer mit hohem pH-Wert hinzu, um die β-Hexosaminidase-Aktivität zu hemmen und die Reaktion zu stoppen.

Messen Sie mit einem Mikroplatten-Reader die Fluoreszenz des gebildeten Produkts, die auf die freigesetzte β-Hexosaminidase-Aktivität hinweist, und damit das allergische Potenzial des Antigens, eine basophile Degranulation zu induzieren.

Zentrifugieren Sie die vorinkubierte Ag8/Serum-Suspension und übertragen Sie 50 Mikroliter der zentrifugierten Ag8/Serum-Suspension in jede Vertiefung mit humanisierten RBL-Zellen, ohne das Ag8-Zellpellet zu stören.

Verwenden Sie sensibilisierte, nicht stimulierte Zellen ohne Antigen als Nicht-Antigen-Kontrolle zur Anzeige des unteren Signalplateaus oder des Hintergrunds und sensibilisieren Sie nicht die Vertiefungen für die Hintergrund- und Maximallysekontrolle. Decken Sie die Platte mit dem Deckel ab und inkubieren Sie sie über Nacht bei 37 Grad Celsius und 5 % bis 7 % Kohlendioxid.

Aspirieren Sie das serenhaltige Zellmedium. Drehen Sie die Platte um und klopfen Sie sie auf das saugfähige Papier, um die Platte zum Waschen humanisierter RBL-Zellen zu entleeren. Waschen Sie die Zellen dreimal, indem Sie 200 Mikroliter Tyrode-Puffer pro Vertiefung hinzufügen, und inkubieren Sie sie in den ersten beiden Wäschen etwa 30 Sekunden lang pro Waschgang. Nachdem Sie den Tyrode-Puffer zum dritten Mal hinzugefügt haben, aspirieren Sie den Puffer und lassen Sie die Lösung in den Vertiefungen, bis die Antigenverdünnung hinzugefügt werden kann.

Übertragen Sie 100 Mikroliter Antigenlösung in jede Vertiefung, die die vorsensibilisierten, humanisierten RBL-Zellen enthält, aber stimulieren Sie nicht die maximale Lyse und nicht sensibilisierte Hintergrundzellen mit Antigen.

Geben Sie 100 Mikroliter Tyrode-Puffer in die maximalen Lysekontrollvertiefungen, die nicht sensibilisierten Hintergrundkontrollvertiefungen und die sensibilisierten Vertiefungen ohne Antigene. Inkubieren Sie die Zellen eine Stunde lang bei 37 Grad Celsius und 5 % bis 7 % Kohlendioxid.

Behandeln Sie die maximalen Lysekontrollwells mit 10 Mikrolitern 10 % Triton X-100 pro Vertiefung und mischen Sie richtig, um die Zellen vollständig zu lysieren, um eine 100%ige Freisetzung von Beta-Hexosaminidase zu erreichen. Geben Sie 50 Mikroliter Substratlösung in eine neue, unverbindliche 96-Well-Platte.

Übertragen Sie 50 Mikroliter Überstand aus den Vertiefungen der humanisierten RBL-Zellen-haltigen Platte in die neue Platte mit der Substratlösung und inkubieren Sie die Platte eine Stunde lang bei 37 Grad Celsius, um die Umwandlung des fluorogenen Substrats zu ermöglichen.

Geben Sie 100 Mikroliter Stopplösung pro Vertiefung hinzu und messen Sie die Fluoreszenz wie im Textmanuskript beschrieben.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026