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Rekombinante Adeno-assoziierte Viren, rAAVs, gentechnisch veränderte, unbehüllte, einzelsträngige DNA-Viren, sind vielversprechende therapeutische Genträger.
rAAVs binden an die Membranrezeptoren der Zielzellen und durchlaufen eine Clathrin-vermittelte Endozytose, die die nukleäre Abgabe des rAAV-Genoms und die therapeutische Genexpression erleichtert. Neutralisierende Antikörper des Immunsystems, die gegen rAAVs gerichtet sind, binden jedoch an das spezifische rAAV-Epitop und stören die Zellmembranbindung, den Zelleintritt und den Gentransfer.
Um neutralisierende Antikörper gegen spezifische rAAVs im Schafserum nachzuweisen, erhalten Sie zunächst geeignete Konzentrationen von verdünntem Serum. Fügen Sie rekombinante AAVs hinzu, die das humane plazentare alkalische Phosphatase-Gen hPLAP exprimieren. Lassen Sie neutralisierende Antikörper AAVs binden und neutralisieren.
Diese Mischung wird in die Vertiefungen einer Multi-Well-Platte mit adhärenter humaner Epithelzellkultur überführt. Nach der Inkubation durchlaufen AAVs eine zelluläre Endozytose. Transduzierte Zellen exprimieren zellmembrangebundenes hPLAP. Neutralisierte AAVs können jedoch nicht in die Zellen eindringen.
Entsorgen Sie das Medium aus den Vertiefungen. Verwenden Sie Paraformaldehyd, um die Zellen zu fixieren. Fügen Sie vorgewärmten Puffer hinzu und erhitzen Sie die Zellen, um die endogene zelluläre alkalische Phosphatase zu inaktivieren. hPLAP ist beständig gegen Hitzeinaktivierung.
Fügen Sie die hPLAP-Substrate - Bromchlorindolylphosphat, BCIP und Nitroblautetrazolium, NBT - hinzu. hPLAP dephosphoryliert BCIP, das einer Dimerisierung unterzogen wird, und bildet ein blaues Zwischenprodukt. Die freigesetzten Wasserstoffionen reduzieren NBT, wodurch ein unlöslicher violetter Niederschlag entsteht. Bild, um violette Ablagerungen zu beobachten, die die transduzierten Zellen umgeben.
Ein geringerer Anteil der violetten Fläche deutet auf eine erhöhte Konzentration von AAV-neutralisierenden Antikörpern hin.
Beginnen Sie mit der Beschichtung der HT1080-Zellen am ersten Tag, indem Sie die Zellen auf eine Konzentration von 1 x 105 Zellen/ml in vorgewärmten vollständigen DMEM-Medien verdünnen.
Dann säen Sie 100 Mikroliter Zellen pro Vertiefung in durchsichtige 96-Well-Platten mit flachem Boden bis zu einer Konzentration von 1 x 104 Zellen pro Vertiefung. Inkubieren Sie die Platte bei 37 Grad Celsius mit 5 % Kohlendioxid über Nacht für 16 bis 22 Stunden.
Am zweiten Tag erzeugen Sie serielle Verdünnungen der interessierenden Serumproben in 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen unter Verwendung von vorgewärmtem vollständigem DMEM.
Zu jedem Röhrchen mit verdünnten Serumproben werden 66 Mikroliter des 7,5 x 106 Virusgenoms pro Mikroliter Virusarbeitslösung gegeben. Mischen Sie die Virus-/Serumverdünnungen durch Pipettieren und legen Sie dann die Röhrchen mit den Virus-Serum-Gemischen 30 Minuten lang bei 37 Grad Celsius und 5 % Kohlendioxid in einen Inkubator, damit eine mögliche Neutralisation stattfinden kann.
Pipettieren Sie nach 30 Minuten 100 Mikroliter des Virus-Serum-Gemisches in jede Vertiefung auf der 96-Well-Platte, die 1 x 104 Zellen pro Vertiefung enthält, und wickeln Sie die Platte dann in eine Folie, um sie über Nacht für 16 bis 24 Stunden in einen Inkubator bei 37 Grad Celsius mit 5 % Kohlendioxid zu stellen.
Am dritten Tag saugen Sie das Medium mit einem Abzugsvakuum aus den Vertiefungen der 96-Well-Platte an, ohne die anhaftenden Zellen zu stören, und geben Sie 50 Mikroliter 4 % Paraformaldehyd in jede Vertiefung. Nachdem Sie die Platte in Folie eingewickelt haben, lassen Sie sie 10 Minuten bei Raumtemperatur.
Später waschen und aspirieren Sie die Zellen zweimal mit 200 Mikrolitern PBS bei Raumtemperatur. Pipettieren Sie nach dem zweiten Waschen 200 Mikroliter vorgewärmtes PBS in jede Vertiefung und wickeln Sie die Platte in Folie ein, gefolgt von einer Inkubation bei 65 Grad Celsius für 90 Minuten, um die endogene alkalische Phosphataseaktivität zu denaturieren.
Nach der Inkubation 50 Mikroliter des frisch zubereiteten, gelösten BCIP/NBT in jede Vertiefung geben und die eingewickelten Platten 2 bis 24 Stunden bei Raumtemperatur inkubieren. Machen Sie später Fotos von jeder Vertiefung mit einem 4-fach-Objektiv in einer Lichtmikroskopkamera, um sicherzustellen, dass für alle Assays die gleiche Belichtung, der gleiche Weißabgleich und die gleichen Lichteinstellungen verwendet werden.