In-vitro-Persister-Assay: Eine Methode zur Bewertung der Wirkung von Osmolyten auf die bakterielle Persistenz

0 Ansichten4:54 Min. • July 8th, 2025

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Wenn sie schädlichen Umweltbedingungen ausgesetzt werden, gelangt eine Untergruppe von Bakterien in einen Zustand geringer Stoffwechselaktivität und entzieht sich so den schädlichen Auswirkungen. Diese Bakterien, die als Persister bezeichnet werden, können eine vorübergehende Exposition gegenüber hohen Konzentrationen von Antibiotika tolerieren.

Um die Wirkung von Osmolyten - kleinen organischen gelösten Stoffen - auf die bakterielle Persistenz zu untersuchen, wird zunächst eine Exponentialphase-Bakterienzellkultur mit bereits vorhandenen Persisteren unterhalb der Nachweisgrenze erhalten, die in Medien suspendiert sind.

Als nächstes wird die Suspension in osmolythaltige Vertiefungen einer Microarray-Platte überführt. Halten Sie eine Reihe von Vertiefungen ohne Osmolyt als Kontrolle. Versiegeln Sie die Platte mit einer gasdurchlässigen Membran, um eine schnelle Gasdiffusion für das Zellwachstum und die Inkubation zu ermöglichen.

Die Osmolyten im Medium induzieren in geeigneten Konzentrationen osmotischen Stress, der einige Zellen dazu veranlasst, ihren Zellstoffwechsel von schnellem zu langsamem Wachstum umzuprogrammieren und Persister zu bilden.

Übertragen Sie nun die mit Osmolyten behandelten Zellen und Kontrollzellen auf eine antibiotikahaltige Persister-Assay-Platte. Verschließen Sie die Persister-Assay-Platte und inkubieren Sie.

In Gegenwart von Antibiotika sterben normale Zellen ab, während Persister - da sie antibiotikatolerant sind - überleben. Zum Schluss wird eine kleine Fraktion der Zellen gesammelt, seriell mit Puffer verdünnt und auf eine antibiotikafreie Agarplatte aufgetragen. Inkubieren Sie die Platte.

In Abwesenheit von Antibiotika nehmen die Persister ihr Wachstum wieder auf, vermehren sich und bilden Kolonien. Zähle die Anzahl der Kolonien auf der Agarplatte.

Eine höhere Anzahl von Kolonien als bei der No-Osmolyt-Kontrolle nach einer antibiotischen Behandlung deutet auf einen positiven Effekt von Osmolyten auf die Persisterbildung hin.

Beginnen Sie mit der Vorbereitung von Microarray-Zellkulturen.

250 Mikroliter Exponentialphasenzellen werden in ein 50-Milliliter-Zentrifugenröhrchen mit 25 Millilitern frischem modifiziertem LB-Medium überführt. Mischen Sie dann die Zellsuspension vorsichtig, um sie homogen zu machen.

Die verdünnte Zellsuspension wird in ein steriles 50-Milliliter-Reservoir überführt. Übertragen Sie mit einer Mehrkanalpipette 150 Mikroliter der Zellsuspension in jede Vertiefung einer Microarray-Platte, die verschiedene Chemikalien enthält. Microarrays können auch manuell erzeugt werden, nach der im Textmanuskript beschriebenen Methode.

Decken Sie die Microarray-Platte mit einer gasdurchlässigen Dichtungsmembran ab und inkubieren Sie sie in einem Orbitalschüttler bei 37 Grad Celsius und 250 U/min für 24 Stunden.

Zur Herstellung von Persister-Assay-Platten bereiten Sie 25 Milliliter modifiziertes LB-Medium mit 5 Mikrogramm pro Milliliter Ofloxacin in einem 50-Milliliter-Zentrifugenröhrchen vor und überführen Sie dieses Medium in ein steriles Reservoir.

Übertragen Sie 190 Mikroliter des modifizierten LB-Mediums in jede Vertiefung einer generischen 96-Well-Platte mit flachem Boden. Nach der 24-stündigen Inkubation nehmen Sie den Microarray aus dem Schüttler und übertragen Sie 10 Mikroliter Zellkulturen aus dem Microarray in die Vertiefungen der Persister-Assay-Platte, die modifiziertes LB-Medium mit Ofloxacin enthält.

Nehmen Sie 10 Mikroliter Zellsuspensionen von der Persister-Assay-Platte und verdünnen Sie sie 3-mal seriell in 290 Mikrolitern PBS-Lösung, wobei Sie eine 96-Well-Platte mit rundem Boden und eine Mehrkanalpipette verwenden. Dann werden 10 Mikroliter aller seriell verdünnten Zellsuspensionen auf antibiotikafreie frische Agarplatten aufgebracht.

Decken Sie die Persister-Assay-Platte mit einer gasdurchlässigen Dichtungsmembran ab und inkubieren Sie sie sechs Stunden lang bei 37 Grad Celsius und 250 U/min in einem Orbitalschüttler.

Wiederholen Sie nach der 6-stündigen Inkubation die serielle Verdünnung und Fleckenbildung auf den Agarplatten. Inkubieren Sie die Agarplatten 16 Stunden lang bei 37 Grad Celsius und zählen Sie dann die koloniebildenden Einheiten (KBE). Verwenden Sie die KBE-Werte vor und sechs Stunden nach der Antibiotikabehandlung, um die Persister-Fraktion in jeder Vertiefung zu berechnen.

Die KBE-Zählung vor der OFX-Behandlung hilft auch bei der Beurteilung der Auswirkungen von Osmolyten auf die Lebensfähigkeit von E. coli.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026