Caspase-3/7-Assay: Ein lumineszenzbasierter Assay zur Quantifizierung der Apoptose durch Messung der Caspase-3/7-Aktivitäten in Froschhaut-Explantaten

0 Ansichten2:54 Min. • July 8th, 2025

Caspase-3 und Caspase-7 sind Proteasen, die die DEDD-Tetrapeptidsequenz in Zielproteinen erkennen und sie am C-Terminus des Asparaginsäurerests spalten. Diese spielen eine herausragende Rolle bei der Apoptose-Kaskade – dem programmierten Zelltod.

Um die Caspase-3/7-Aktivität in apoptotischen Zellen zu beurteilen, beginnen Sie mit einem Röhrchen mit einem Explantat aus Froschzehenhaut, das mit Apoptose-induzierenden Pilzen infiziert ist. Geben Sie einen geeigneten Puffer und ein paar Metallperlen in die Tube.

Verwenden Sie Bead-Beating, um die Hautzellen aufzubrechen und zelluläre Inhalte, einschließlich Caspase-3/7-Proteine, freizusetzen. Zentrifugieren Sie das Rohr, die Zellreste und die Organellen. Aspirieren Sie den proteinreichen Überstand aus dem Röhrchen und pipettieren Sie ihn in die Vertiefungen einer Multiwell-Assay-Platte.

Ergänzen Sie die Vertiefungen mit dem luminogenen Caspase-Reagenz. Dieses Reagenz besteht aus einem prolumineszierenden Substrat, das das DEVID-Peptid in einer gepufferten Lösung enthält, die ATP, Magnesiumionen und das Luciferase-Enzym enthält.

Den Inhalt der Vertiefung mischen und inkubieren. Während der Inkubation spaltet Caspase-3/7 das prolumineszierende Substrat und setzt Aminoluciferin - ein Substrat für Luciferase - in die Lösung frei.

In Gegenwart von ATP- und Magnesiumionen oxidiert Luciferase das freigesetzte Aminoluciferin und erzeugt ein biolumineszierendes Produkt. Die Lichtmenge, die während der Reaktion erzeugt wird, ist proportional zur Caspase-Aktivität.

Um Proteine aus einer gefrorenen Froschzehenprobe zu extrahieren, geben Sie die Probe in ein 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen mit Schraubverschluss, das 100 Mikroliter Probenpuffer und zwei Edelstahlkügelchen enthält.

Verwenden Sie einen Rührer mit maximaler Geschwindigkeit, um die Zellen zu lysieren. Legen Sie danach das Röhrchen 3 Minuten lang auf Eis und zentrifugieren Sie das Röhrchen, um den Überstand aufzufangen.

Um den Caspase 3/7-Assay in einer 384-Well-Platte durchzuführen, fügen Sie 10 Mikroliter Probenpuffer als Blindprobe und 10 Mikroliter Proteinextrakt in dreifacher Ausfertigung hinzu. Pipettieren Sie dann 10 Mikroliter des im Handel erhältlichen Caspase 3/7-Reagenzes in den Proteinextrakt und öffnen Sie die leeren Vertiefungen. Schütteln Sie dann die Platte 15 Sekunden lang vorsichtig, um die beiden Reagenzien zu mischen.

Bei

Raumtemperatur und Dunkelheit 30 Minuten inkubieren. Verwenden Sie abschließend ein Lumineszenzplatten-Lesegerät, um die Lumineszenz der Probe zu messen.

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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026