Ein Assay zur Untersuchung der Wirkung der Testsubstanz gegen PolyQ-vermittelte Neurotoxizität bei Würmern

0 Ansichten4:06 Min. • July 8th, 2025

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Bestimmte erbliche neurodegenerative Erkrankungen betreffen Proteine mit einer langen Kette von Glutaminresten, die als Polyglutamin, PolyQ, bezeichnet werden. Diese strukturell instabilen, fehlfaltungsanfälligen Proteine akkumulieren schließlich zu toxischen Aggregaten, die sich negativ auf die neuronale Funktion und das Überleben auswirken.

Um das protektive Potenzial einer Testsubstanz für das neuronale Überleben gegen polyQ-vermittelte Neurotoxizität zu bewerten, beginnen Sie mit einer Suspension von transgenen Caenorhabditis elegans-Larven, die fluoreszierende und polyQ-Proteine in ASH-Neuronen – gepaarten chemosensorischen – exprimieren.

In eine Multi-Well-Platte, die das Medium und die bakterielle Nahrungsquelle enthält, in die Vertiefungen umfüllen. Geben Sie die Testmasse in eine Vertiefung. Versiegeln Sie die Platte, um die Austrocknung und Kontamination des Mediums zu minimieren. Ausbrüten.

Während der Wurmentwicklung bilden polyQ-Proteine Aggregate in den ASH-Neuronen, was zu einer aggregationsassoziierten Neurotoxizität führt und das Überleben der Neuronen beeinflusst.

Falls vorhanden, dringt die Testsubstanz in die Neuronen ein und kann aufgrund ihrer neuroprotektiven Fähigkeit die Aggregation von PolyQ-Proteinen unterdrücken, wodurch die damit verbundene Neurotoxizität gemildert und das Überleben der Neuronen verbessert wird.

Sammle die erwachsenen Würmer und zentrifugiere sie. Die Würmer werden in einem geeigneten Puffer resuspendiert und auf ein Agarose-Pad mit einer geeigneten Chemikalie zur Immobilisierung übertragen.

Visualisieren Sie mit einem Fluoreszenzmikroskop die ASH-Neuronen, um fluoreszierende Proteine zu erkennen, die ein Indikator für das Überleben von Neuronen sind.

Eine höhere Fluoreszenz in der Behandlung als in Kontrollvertiefungen deutet auf eine erhöhte neuronale Überlebensrate hin, was auf das neuroprotektive Potenzial der Testsubstanz bei der Unterdrückung der PolyQ-Aggregation und der damit verbundenen Neurotoxizität hinweist.

Um Nematoden für den polyQ-Neurotoxizitätstest vorzubereiten, übertragen Sie 300 bis 500 synchronisierte L1-Larven von HA759-Nematoden in jede Vertiefung einer 48-Well-Platte mit 500 Mikrolitern S-Medium, das den OP50-Stamm von E. coli und 5 Milligramm pro Milliliter Astragalan enthält. Nachdem Sie die Platten versiegelt haben, inkubieren, ernten und resuspendieren Sie die Nematoden in M9-Puffer, wie gezeigt.

Bereiten Sie nun ein Agarose-Pad vor, indem Sie 2 Gramm Agarose zu 100 Millilitern M9-Puffer hinzufügen und die Lösung in der Mikrowelle erhitzen, bis sie fast siedet. Geben Sie 0,5 Milliliter geschmolzene Agarose auf die Mitte eines 1 Millimeter dicken Objektträgers, der zwischen zwei 2 Millimeter dicken Glasplatten platziert und vertikal mit einem weiteren Objektträger bedeckt wird. Entfernen Sie vorsichtig den oberen Objektträger, sobald die Agarose abgekühlt und fest geworden ist.

Beginnen Sie den neuronalen ASH-Überlebenstest, indem Sie einen Tropfen 20 millimolare Natriumazide auf das Agarosepad geben und dann 15 bis 20 HA759-Nematoden in den Tropfen übertragen, um sie zu immobilisieren. Legen Sie vorsichtig einen Deckzettel über die Nematoden.

Bewahren Sie nun den Objektträger unter einem Fluoreszenzmikroskop auf, das mit einer Digitalkamera ausgestattet ist. Wählen Sie eine 40-fach-Objektivlinse und einen FITC-Filter, um GFP-positive ASH-Neuronen im Kopfbereich der Nematoden zu erkennen.

Wählen Sie mehr als 50 Nematoden in jeder Gruppe nach dem Zufallsprinzip aus, um die Anzahl der Nematoden mit GFP-markierten bilateralen ASH-Neuronen in ihrer Kopfregion zu zählen und dann die Überlebensrate der ASH-Neuronen zu berechnen.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026