Aderhaut-Keimungs-Assay zur Ex-vivo-Untersuchung der okulären mikrovaskulären Proliferation

0 Ansichten3:48 Min. • July 8th, 2025

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Im Auge eines Säugetieres enthält die Aderhaut, die sich zwischen Sklera und Netzhaut befindet, perivaskuläre Makrophagen und die Choriokapillaris – eine Schicht von Blutkapillaren, die von Perizyten ausgekleidet sind und die Netzhaut mit Sauerstoff und Nährstoffen versorgen. Abnorme Blutgefäße, die aus der Choriokapillaris sprießen, treten bei mehreren vaskulären Augenerkrankungen auf.

Um dysregulierte Choriokapillaris, die ex vivo sprießen, zu untersuchen, nehmen Sie geerntete Mausaugen-Explantate, die die Aderhaut enthalten, die an die Sklera und das retinale Pigmentepithel (RPE) gebunden ist.

Geben Sie Tröpfchen aus Basalmembranextrakt (BME) – einem Hydrogel, das mit extrazellulären Matrixproteinen angereichert ist – in die Vertiefungen einer Multi-Well-Platte. Legen Sie die Explantate in das Tröpfchen, um eine Abflachung des Gewebes zu vermeiden. Lassen Sie den BME erstarren.

Fügen Sie Medium hinzu, das mit Endothelzellen oder EC-spezifischen Wachstumsfaktoren ergänzt ist. Ausbrüten. Das RPE sezerniert den vaskulären endothelialen Wachstumsfaktor, der neben den EC-spezifischen Wachstumsfaktoren die kapillare EC-Proliferation stimuliert.

Das verfestigte BME bildet eine extrazelluläre Matrix, die die proliferierenden ECs dazu anregt, sprießende kapillarartige Tubuli zu bilden. Perizyten wandern und heften sich an diese sprießenden Kapillaren, was die Reifung der Kapillar-ECs erleichtert.

Aktivierte Makrophagen in der Keimregion sezernieren Enzyme, um die Bruch-Membran – die innerste Aderhautschicht – zu verdauen, die es den Sprossen ermöglicht, in das RPE zu wandern.

Visualisieren Sie unter einem Mikroskop die sprießenden Kapillaren. Messen Sie mit einer geeigneten Software die Fläche, die der Aderhautsprossen bedeckt

.

Eine größere Aderhautfläche deutet auf eine progressive Choriokapillaris hin, die im Explantat keimt.

Geben Sie 30 Mikroliter des aufgetauten BME in die Mitte jeder Vertiefung einer 24-Well-Gewebekulturplatte. Achten Sie darauf, dass das Tröpfchen BME am Boden der Platte eine konvexe Kuppel bildet, ohne die Ränder zu berühren.

Lege das Taschentuch in die Mitte des BME. Glätten Sie die Aderhaut-Explantation nicht. Lassen Sie das Gewebe innerhalb des BME expandieren. Inkubieren Sie die Platte 10 Minuten lang bei 37 Grad Celsius, damit sich das Gel verfestigen kann. Geben Sie dann 500 Mikroliter komplettes klassisches Medium in jede Vertiefung. Wechseln Sie das klassische Medium jeden zweiten Tag.

Das Keimen der Aderhaut kann nach drei Tagen mit dem Mikroskop beobachtet werden. Öffnen Sie das Aderhaut-Keimbild mit Bild J und aktivieren Sie "Bild | Typ | und 8-Bit" mit Graustufen. Optimieren Sie dann den Kontrast, indem Sie "Bild | Anpassen | Helligkeit/Kontrast" und passen Sie ihn an.

Verwenden Sie die Funktion "Zauberstab", um das Aderhautgewebe, das in der Mitte der Sprossen vorhanden ist, zu umreißen und zu entfernen. Entfernen Sie den Hintergrund des Bildes mit den freien Auswahlwerkzeugen.

Gehen Sie anschließend zu "Bild | Anpassen | Threshold " und verwenden Sie die Funktion "Threshold", um die mikrovaskulären Sprossen vor dem Hintergrund und der Peripherie zu definieren. Klicken Sie auf "F2" und eine Zusammenfassung wird angezeigt. Klicken Sie auf "Speichern", um ein Bild des ausgewählten Bereichs im selben Ordner wie das Originalbild zum späteren Nachschlagen zu speichern.

Nachdem eine Gruppe von Proben gemessen wurde, kopieren Sie die aufgezeichneten Daten zur Analyse.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026