Quantitative Polymerase-Kettenreaktion zur Aufzählung von Bakteriophagen

0 Ansichten3:25 Min. • July 8th, 2025

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Um Bakteriophagen mittels quantitativer Polymerase-Kettenreaktion, qPCR, aufzuzählen, erhalten Sie einen qPCR-Reaktionscocktail, der Taq-DNA-Polymerase, Primer, Desoxynukleotidtriphosphate – dNTPs – und fluoreszierende Reporterfarbstoffmoleküle in einem optimierten Puffer enthält. In die Vertiefungen einer qPCR-Platte überführen.

Fügen Sie wärmebehandelte Bakteriophagen hinzu. Bei der Wärmebehandlung wird die DNA von Bakteriophagen aus Bakteriophagenpartikeln freigesetzt. Versiegeln Sie die Platte, um die Verdunstung der Mischung zu verhindern. Legen Sie die Platte in das qPCR-System ein und stellen Sie geeignete Zyklusbedingungen ein.

Durch das Erhitzen auf hohe Temperaturen wird die doppelsträngige DNA in Einzelstränge denaturiert. Es aktiviert auch die Taq-DNA-Polymerase. Das Annealing bewirkt, dass sequenzspezifische Primer an die komplementären DNA-Stränge der Bakteriophagen binden. Die Verlängerung ermöglicht es der aktivierten Taq-DNA-Polymerase, dNTPs an das 3'-Ende des Primers anzuhängen, wodurch der wachsende DNA-Strang in 5'- bis 3'-Richtung verlängert wird.

Die Farbstoffmoleküle interkalieren in die neu synthetisierte doppelsträngige DNA, was zu einer erhöhten Fluoreszenzintensität führt. Jeder PCR-Zyklus verdoppelt die Ziel-DNA-Menge und erhöht die Fluoreszenzintensität.

Bestimmen Sie den Schwellenwert für den Ct-Wert, bei dem die gemessene Fluoreszenz den Hintergrundwert überschreitet.

Der Ct-Wert steht in umgekehrtem Verhältnis zur Ausgangs-DNA-Menge, wobei jedes Bakteriophagen-Genom einem Bakteriophagen-Partikel entspricht, was die Quantifizierung von Bakteriophagen anhand der DNA-Standardkurve der Bakteriophagen erleichtert.

Führen Sie nach der Intensivierung eine Schmelzkurvenanalyse durch und erhöhen Sie die Reaktionstemperatur allmählich. Bei einer bestimmten Schmelztemperatur trennt sich die Hälfte der DNA in Einzelstränge, wodurch Farbstoffmoleküle freigesetzt und eine plötzliche Abnahme der Fluoreszenz verursacht wird.

Eine ausgeprägte Schmelztemperatur, die für das qPCR-Produkt einzigartig ist, bestätigt die Produktspezifität.

Bereiten Sie die qPCR-Vormischung für 10 biopanierte Phagenproben mit unbekannter Konzentration und 7 Proben mit Standardkonzentrationen in dreifacher Ausfertigung vor, was zu einer Vormischung für 51 Proben führt, die 255 Mikroliter qPCR-Mastermix, 51 Mikroliter Primer und 102 Mikroliter Wasser enthalten.

Aliquotieren Sie 8 Mikroliter der vorbereiteten PCR-Mischung in 51 Vertiefungen einer 96-Well-qPCR-Platte. Geben Sie als Nächstes zwei Mikroliter wärmebehandelter T7-Phagenproben in jede dieser Vertiefungen und geben Sie sie unter der Oberfläche der qPCR-Vormischung ab. Versiegeln Sie die Platte mit Klebefolie.

Wickeln Sie die Platte in Aluminiumfolie ein, um das Fluoreszenz-Photobleichen zu minimieren, und fahren Sie dann mit dem Ausführen der Platte auf dem qPCR-Gerät fort. Richten Sie die Zyklusbedingungen und die Einstellungen für die Schmelzkurve ein, wie im Textprotokoll beschrieben.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026