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Spezifische Wachstumsfaktoren und Zytokine regulieren die Differenzierung von Monozyten – Zellen des angeborenen Immunsystems – in proinflammatorische M1- oder entzündungshemmende M2-Makrophagen.
Um die Monozytendifferenzierung zu untersuchen, säen mononukleäre Zellen des peripheren Blutes in einer Kunststoff-Multiwell-Platte, die ein geeignetes Medium enthält. Inkubieren, damit sich die Monozyten an der Plattenoberfläche anheften können, während die nicht adhärenten mononukleären Zellen in der Schwebe bleiben. Entfernen Sie die nicht adhärenten Zellen.
Geben Sie ein Medium, das den Wachstumsfaktor Granulozyten-Makrophagen-Kolonie-stimulierenden Faktor, GM-CSF, enthält, in einen Satz von Vertiefungen und ein Medium, das den Makrophagen-Kolonie-stimulierenden Faktor, M-CSF, enthält, in den anderen.
GM-CSF bindet an seinen heterodimeren Rezeptor auf der Oberfläche der Monozytenzelle, was zu einer Monozytenexpansion und Differenzierung in M1-ähnliche Makrophagen führt, gekoppelt mit einer proinflammatorischen Zytokinfreisetzung.
M-CSF bindet an seinen homodimeren Rezeptor auf der Oberfläche der Monozytenzellen und löst die Monozytenproliferation, die Differenzierung in M2-ähnliche Makrophagen und die entzündungshemmende Zytokinfreisetzung aus.
Inkubieren Sie die M1-ähnlichen Makrophagen mit Lipopolysaccharid, LPS und dem Zytokin Interferon-gamma, IFN-γ.
Die Behandlung mit LPS und IFN γ führt zu vollständig polarisierten und reifen proinflammatorischen M1-Makrophagen mit einer erhöhten Freisetzung von proinflammatorischen Zytokinen und reaktiven Sauerstoffspezies.
Umgekehrt stimuliert die Inkubation mit Interleukin-4 die Reifung und Polarisation von M2-ähnlichen Makrophagen in den entzündungshemmenden M2-Phänotyp, zusammen mit einer erhöhten entzündungshemmenden Zytokinproduktion.
Visualisieren Sie die Makrophagen unter einem Lichtmikroskop. M1-Makrophagen erscheinen länglich und gestreckt, während M2-Makrophagen eine abgerundete Morphologie aufweisen.
Um die Makrophagendifferenzierung zu initiieren, verdünnen Sie die Zellen auf eine Konzentration von 5 x 106 Zellen pro Milliliter serumfreies Medium und säen Sie 2 Milliliter Zellen in einzelne Vertiefungen einer 6-Well-Platte aus. Legen Sie die Platte für zwei bis drei Stunden in den Zellkultur-Inkubator, damit die Zellen an den Well-Böden haften können.
Am Ende der Inkubation waschen Sie die Vertiefungen dreimal mit 1 Milliliter serumfreiem Medium pro Waschgang und fügen Sie 2 Milliliter vollständiges RPMI-Medium, ergänzt mit 50 Nanogramm pro Milliliter GM-CSF oder 50 Nanogramm pro Milliliter M-CSF, für die M1- bzw. M2-Differenzierung, zu jeder Vertiefung der adhärenten Zellen hinzu.
Drei Tage nach Beginn der Polarisation 1 Milliliter Überstand aus jeder Vertiefung vorsichtig durch 1 Milliliter frisches vollständiges Medium ersetzen, das mit den entsprechenden Wachstumsfaktoren ergänzt wird.
Am Tag 6 der Kultur geben Sie 50 Nanogramm pro Milliliter Interferon-gamma und 10 Nanogramm pro Milliliter LPS in die GM-CSF-behandelten Vertiefungen und 20 Nanogramm pro Milliliter IL4 in die M-CSF-behandelten Vertiefungen.
Überprüfen Sie die Morphologie der aus Monozyten gewonnenen Zellkulturen regelmäßig durch Lichtmikroskopie, um sicherzustellen, dass sich die kleineren Monozyten zu größeren Makrophagen-ähnlichen Zellen differenzieren.