Dreidimensionales Thymuskultursystem zur Erzeugung von iPSC-abgeleiteten Thymus-Emigranten

0 Ansichten5:06 Min. • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zur Erzeugung von iPSC-abgeleiteten Thymus-Emigranten, iTEs aus unreifen T-Zellen in einem 3D-Thymus-Organkultursystem, werden mit Desoxyguanosin und dGUO behandelte fetale Maus-Thymuslappen in geeigneten Medien eingenommen.

dGUO gelangt in das thymusische Milieu und zerstört endogene thymusische Lymphozyten, wodurch deren Interferenz mit iPSC-abgeleiteten unreifen T-Zellen während der Co-Kultur verhindert wird.

Mache einen tiefen Schnitt in der Mitte jedes Thymuslappens. Übertragen Sie die Lappen in eine frische Kulturschale, die Medium enthält, das mit den Wachstumsfaktoren, dem Stammzellfaktor, dem FLT3-Liganden und Interleukin-7 ergänzt ist.

Pipettieren Sie das mit dem Thymuslappen enthaltende Medium in die Vertiefungen einer 3D-Kulturplatte. Fügen Sie iPSC-abgeleitete unreife T-Zellen hinzu. Ausbrüten. Die T-Zellen wandern durch den Schnitt in die Thymuslappen.

Im thymischen Milieu binden die Wachstumsfaktoren FLT3-Ligand und IL-7 an ihre jeweiligen Rezeptoren auf unreifen T-Zellen, was zur Aktivierung von Transkriptionsfaktoren und zur Expression spezifischer Gene führt.

Infolgedessen durchlaufen die unreifen T-Zellen eine Reihe von Veränderungen und erhalten spezifische Eigenschaften, bis sie schließlich zu CD8αβ+ T-Zellen heranreifen, die CD8-Moleküle, T-Zell-Rezeptoren und MHC-Klasse-I-Moleküle auf ihrer Oberfläche exprimieren.

Entfernen Sie die unreifen T-Zellen, die es nicht geschafft haben, in die Lappen zu wandern.

Die reifen iTEs wandern aus den Thymuslappen heraus, was unter einem Lichtmikroskop als haloartiges Muster um die Lappen herum sichtbar gemacht werden kann.

Nehmen Sie am 7. Tag der dGUO-Behandlung vier neue 10-Zentimeter-Schalen heraus. Füllen Sie jede Schale mit Millilitern des kompletten Mediums. Alle Nitrozellulosemembranen mit den Thymuslappen in eine 10-Zentimeter-Schale geben. Lösen Sie die einzelnen Lappen mit einer Pinzette von der Membran und tauchen Sie sie in das Medium.

Inkubieren Sie die Lappen 1 Stunde lang bei Raumtemperatur. Übertragen Sie dann die Thymuslappen in eine neue 10-Zentimeter-Schale mit vollständigem Medium und inkubieren Sie sie 1 Stunde lang bei Raumtemperatur. Wiederholen Sie diesen Transfer und die Inkubation noch zwei weitere Male.

Befestigen Sie mit einer Pinzette die Thymuslappen an der Schale, während Sie mit der anderen Hand einen 100 bis 200 Mikrometer tiefen Schnitt in der Mitte machen und die Hälfte des Durchmessers des Lappens verlängern, um die Migration der T-Zell-Vorläuferzellen in den Lappen zu erleichtern.

Übertragen Sie die Thymuslappen in eine neue 10-Zentimeter-Schale, die mit vollständigen Differenzierungsmedien gefüllt ist. Wenn Sie 3D-Kulturplatten mit unterem und oberem Gitter verwenden, füllen Sie beide Gitter mit sterilem PBS, um das Verdampfen und Austrocknen der hängenden Tropfen zu verhindern.

Übertragen Sie als Nächstes 30 Mikroliter des kompletten Mediums, das einen dGUO-behandelten Thymuslappen enthält, in jede Vertiefung der 3D-Kulturplatte. Sammeln Sie die nicht adhärenten Zellen der T-Linie aus der OP9/DLL1-Co-Kultur und resuspendieren Sie die Zellen mit einer Dichte von 2.000 bis 5.000 Zellen der T-Zelllinie pro 20 Mikroliter Medium. Geben Sie 20 Mikroliter der T-Linien-Zellsuspension in jeden Thymuslappen in der 3D-Kulturplatte. Über Nacht bei 37 Grad Celsius mit 5 % Kohlendioxid inkubieren.

Stellen Sie die P200-Pipette am nächsten Tag auf 30 Mikroliter ein. Pipettieren Sie das Medium in jeder Vertiefung mehrmals auf und ab, um alle Zellen zu entfernen, die den Thymuslappen umgeben. Saugen Sie dann das Medium aus jeder Vertiefung an und ersetzen Sie es durch 30 Mikroliter vollständiges Medium. Wiederholen Sie diesen Vorgang – Pipettieren, Entfernen und Ersetzen des Mediums – 5 bis 7 Mal, um alle zusätzlichen unreifen T-Zellen zu entfernen, die nicht in die Lappen wandern.

Inkubieren Sie die Lappen weiter und stellen Sie sicher, dass täglich 25 bis 30 Mikroliter des Mediums gewechselt werden. Verwenden Sie an Tag 4 oder 5 eine Lichtmikroskopie, um die Bildung eines Halos aus iPSC-abgeleiteten Thymuseinwanderern um die Lappen zu bestätigen. Sammeln Sie die iTEs täglich durch Pipettieren des Mediums ohne Unterbrechung der Keulen. Wechseln Sie das Medium täglich, und setzen Sie die Sammlung bis zu ca. 12 Tagen fort.

Die geernteten iTEs können für molekulare Analysen oder In-vivo-Transplantationsexperimente verwendet werden.

08:02

Die Förderung der 3-D-Aggregation von FACS Purified Thymusepithelzellen mit EAK 16-II / EAKIIH6 Selbstaufbau Hydrogels

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

13:43

Zweistufigen Ansatz - und Ende-Frühstadium der Orgel Formation im Vogelgrippe-Modell zu erkunden: die Thymusdrüse und Nebenschilddrüsen Organogenese Paradigma

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

08:21

Echtzeit- In Vivo Verfolgung von Thymozyten in die Vorderkammer des Auges durch Laser-Scanning-Mikroskopie

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

05:47

Reaggregieren Thymus Kulturen

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

07:50

Herstellung von 2-dGuo-Behandelte Thymus Organkulturen

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

12:47

Gerichtete Differenzierung von induzierten pluripotenten Stammzellen in Richtung T-Lymphozyten

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

08:27

Ableitung von T-Zellen In-vitro- Aus embryonalen Stammzellen der Maus

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

06:47

3D Organotypische Cokulturmodell Unterstützung Mark Thymusepithel Zellproliferation, Differenzierung und Genexpression Promiscuous

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

05:47

Isolation und Transplantation von Different Aged Murine Thymic Grafts.

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

08:56

Charakterisierung von Thymic Einschwingzeit Vorläufern in der Mouse Embryo Verwendung In Vivo Und In-vitro- Assays

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026