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Nehmen Sie eine Multi-Well-Platte mit Makrophagen.
Geben Sie Cryptococcus neoformans in die Testvertiefungen, während die Kontrollvertiefungen nur Makrophagen enthalten.
Makrophagen phagozytieren Pilze in Phagosomen.
Mit Puffer waschen, um nicht phagozytierte Pilze zu entfernen. Fügen Sie antibiotikafreie Medien hinzu. Ausbrüten.
Das Phagosom verschmilzt mit dem Lysosom und bildet ein Phagolysosom. Pilze modulieren den pH-Wert von Phagolysosomen und besitzen intrinsische Mechanismen, um unter rauen phagolysosomalen Bedingungen zu überleben. Pilze permeabilisieren die phagolysosomale Membran und replizieren sich, begleitet von einer zytosolischen Akkumulation von Polysaccharid-gefüllten Vesikel.
Intrazellulärer Pilzaufenthalt und -replikation verursachen zelluläre Schäden und lösen Zelltodwege aus. Dies führt zu einer Makrophagenlyse und einer intrazellulären Freisetzung von Inhalten, einschließlich Laktatdehydrogenase oder LDH, in Medien.
Sammeln Sie LDH-haltige Medien zu unterschiedlichen Zeitpunkten. Lysieren Sie die Kontrollmakrophagen zu ähnlichen Zeitpunkten, um eine maximale zelluläre LDH-Freisetzung zu erzielen. Geben Sie die Assay-Mischung zu den gesammelten Medien und Lysaten. LDH wandelt Laktat in Pyruvat um und reduziert so NAD+. Diaphorase reduziert das Tetrazoliumsalz und bildet ein rotes Formazanprodukt.
Messen Sie mit einem Plattenleser die Formazan-Absorption, um die Makrophagenlyse nach einer Cryptococcus neoformans-Infektion zu quantifizieren.
Um Pilzzellen auf eine Makrophageninfektion vorzubereiten, sammeln und zentrifugieren Sie C. neoformans-Zellen aus einer Kultur in der Mitte der logarithmischen Phase, gefolgt von drei sanften Wäschen mit 1 Milliliter PBS bei Raumtemperatur unter denselben Zentrifugenbedingungen.
Nach der letzten Wäsche resuspendieren Sie die Pilzzellen in einer 1,2-mal 10 bis acht Zellen pro Milliliter antibiotikafreier Zellkulturmedium und fügen Sie 1 Milliliter Pilzzellsuspension in jede der 4 Vertiefungen einer 70 % bis 80 % konfluenten 6-Well-Makrophagenkulturplatte hinzu. Legen Sie die Platte dann für drei Stunden in den Zellkultur-Inkubator. Kippen Sie die Platte vorsichtig, damit jede Vertiefung dreimal vorsichtig mit 1 Milliliter PBS pro Vertiefung und Waschgang gewaschen werden kann.
Um die Infektionsfähigkeit nach dem letzten Waschen zu messen, geben Sie 1 Milliliter antibiotikafreies Medium in jede Vertiefung der 6-Well-Platte und legen Sie die Platte in den Zellkultur-Inkubator. Zu den geeigneten experimentellen Zeitpunkten ist der Überstand aus jeder Vertiefung zu entnehmen und die LDH-Menge in jeder Vertiefung gemäß den Standardprotokollen zu messen. Zu gleichen Zeitpunkten werden die nicht infizierten Makrophagenzellen lysiert, um den Wert für die maximale Zytotoxizität zu bestimmen.
Die Zytotoxizität kann dann mit der angegebenen Formel berechnet werden.