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Nehmen Sie eine Multi-Well-Platte mit adhärenten Epithelzell-Monoschichten. Ersetzen Sie Medien durch serumfreie Medien, um Interferenzen mit dem Serumprotein zu vermeiden. Nach der Inkubation Medien entfernen. Waschen Sie die Zellen mit Puffer. Fügen Sie gekühlte serumfreie Medien hinzu, die Vitronektin enthalten. Bei niedrigeren Temperaturen inkubieren.
Die N-terminale RGD-Domäne von Vitronektin bindet an die Integrinrezeptoren der Epithelzelloberfläche. Niedrigere Temperaturen hemmen die zelluläre Internalisierung des Vitronektin-Integrin-Komplexes.
Nach der Sättigung des Integrinrezeptors das Medium entfernen. Mit Puffer waschen, um überschüssiges Vitronektin zu entfernen, das die bakterielle Vitronectin-abhängige Integrinbindung beeinträchtigen könnte.
Fügen Sie Haemophilus influenzae Typ f oder Hif, einen gramnegativen bakteriellen Erreger, in Suspension hinzu. Ausbrüten.
Protein H auf der Hif-Oberfläche bindet an den C-Terminus des Vitronektins, was die Adhärenz der Hif an der Epithelzelle und die anschließende Internalisierung erleichtert.
Entfernen Sie das Medium und waschen Sie es mit Puffer, um ungebundenes Hif zu entfernen. Verwenden Sie ein Zellablösungsenzym, um die Zellen zu ernten. Fügen Sie serumhaltige Medien hinzu, um die enzymatische Reaktion zu stoppen. Übertragen Sie die Zellsuspension in ein Glasröhrchen mit Glasperlen. Vortex, um die Zellen zu lysieren, wobei internalisierte und an die Oberfläche anhaftende Bakterien freigesetzt werden.
Verdünnen Sie das Lysat mit einem serumfreien Medium und dem Samen auf einer Schokoladen-Agar-Platte. Inkubieren Sie, damit Hif Kolonien bilden kann. Zählen Sie die Völker.
Eine höhere Anzahl von Kolonien deutet auf eine erhöhte Hif-Adhärenz an den Epithelzellen in Gegenwart von Vitronektin hin.
Kultur von A549-Epithelzellen, wie im Textprotokoll beschrieben. Nach einer Wäsche und Trypsinisierung der Zellen bei 37 Grad Celsius verdünnen Sie die Zellsuspension auf 5.000 Zellen pro Milliliter mit einem vollständigen Medium, das 5 Mikrogramm pro Milliliter Gentamicin enthält.
Ersetzen Sie vor einer bakteriellen Infektion das Medium in den Vertiefungen durch F12-Medium und inkubieren Sie es über Nacht bei 37 Grad Celsius. Waschen Sie die Zellmonoschicht dreimal mit 1 Milliliter PBS bei Raumtemperatur. Stellen Sie dann die Platte auf Eis und fügen Sie 200 Mikroliter vorgekühltes F12-Medium hinzu, das 10 Mikrogramm pro Milliliter Vitronektin enthält.
Nachdem Sie die Platte 1 Stunde lang bei 4 Grad Celsius inkubiert haben, verwerfen Sie die Lösung durch Pipettieren und waschen Sie die Zellschicht zweimal mit 1 Milliliter PBS bei Raumtemperatur. Geben Sie 100 Mikroliter frisch gezüchteten Hif-Wildtyp in F12 medium in jede Vertiefung. Inkubieren Sie die Platte 2 Stunden lang bei 37 Grad Celsius. Aspirieren Sie dann das Medium mit einer Pipette und waschen Sie die A549-Epithelzellen dreimal mit PBS bei 50 Mikrolitern pro Vertiefung Zellablösung, gefolgt von einer 5-minütigen Inkubation bei 37 Grad Celsius.
Fügen Sie anschließend 50 Mikroliter F12 Complete Medium pro Vertiefung hinzu, um die enzymatische Reaktion zu stoppen. Übertragen Sie die Epithelzellen aus jeder Vertiefung in ein 6-Milliliter-Glasröhrchen mit 4 Glasperlen. Lysieren Sie die Zellen bei Raumtemperatur, indem Sie sie 2 Minuten lang vortexen.
Nach der 100-fachen Verdünnung des Zelllysats werden 10 Mikroliter der verdünnten Probe auf eine Schokoladen-Agar-Platte aufgebracht. Zählen Sie die Völker nach einer nächtlichen Inkubation bei 37 Grad Celsius.