Intravitalmikroskopie zur Analyse von Wechselwirkungen zwischen Blutzellen und Endothel in einem Entzündungs-Mausmodell

0 Ansichten4:45 Min. • July 8th, 2025

Beginnen Sie mit einer anästhesierten Maus, der intraperitoneal Lipopolysaccharid injiziert wurde, um eine Entzündung auszulösen.

Schneiden Sie den Bauch ein, um die Bauchhöhle freizulegen. Halten Sie die Hydratation der Organe mit Kochsalzlösung aufrecht. Injizieren Sie Rhodamin 6G retroorbital. Die fluoreszierenden Farbstoffmoleküle gelangen in den Blutkreislauf und markieren Leukozyten und Blutplättchen für deren Visualisierung.

Veräußere nun eine Schleife aus Ileum mit ihren Mesenteriengefäßen. Halten Sie das Gewebe mit vorgewärmter Kochsalzlösung hydratisiert, um eine optimale Bildgebung zu gewährleisten. Fokussieren Sie sich unter einem Fluoreszenzmikroskop auf eine Mesenterialvene für die Intravitalmikroskopie.

Die Lipopolysaccharid-Injektion bewirkt eine Aktivierung der Endothelzellen mit der Hochregulierung von Adhäsionsmolekülen, einschließlich Selektinen. Zirkulierende Blutplättchen werden in das Endothel rekrutiert, wo sie über spezifische Adhäsionsmolekül-Liganden-Wechselwirkungen binden und Adhäsionskomplexe bilden.

Aufgrund dieser Wechselwirkungen werden Blutplättchen aktiviert und setzen Granulate frei, die Moleküle enthalten, einschließlich Serotonin, was die Rekrutierung von Leukozyten fördert.

Leukozyten wandern zur Endotheloberfläche und binden an aktivierte Blutplättchen. Darüber hinaus rollen Leukozyten entlang des Endothels und binden durch schwache adhäsive Wechselwirkungen an die Endothelzellen. Die Rollbewegung aktiviert Leukozyten-Integrine für eine feste Adhäsion an Endothelzellen, die für die Leukozyten-Endothel-Transmigration entscheidend ist.

Visualisieren Sie mit Hilfe der Intravitalmikroskopie die fluoreszierenden Leukozyten und Blutplättchen, um ihre Echtzeit-Interaktionen mit Endothelzellen zu bestimmen.

Vier Stunden vor der intravitalen Bildgebung injizieren Sie 20 Milligramm pro Kilogramm LPS IP in eine 16 bis 20 Gramm schwere, 4 bis 6 Wochen alte männliche Maus, um die vorgetäuschte bakterielle Entzündungsreaktion auszulösen.

Erwärmen Sie auch zu diesem Zeitpunkt eine 0,9%ige Kochsalzlösung in einem 37 Grad Celsius warmen Wasserbad zur Befeuchtung der Kunststoffkammer und des Mesenteriumsgewebes. Bestätigen Sie als Nächstes die angemessene Anästhesietiefe, indem Sie bei der mit LPS behandelten Maus nicht auf das Einklemmen der Zehen reagieren, und tragen Sie dann eine Salbe auf die Augen des Tieres auf.

Enthaaren Sie den Bauch mit einem Rasierer und entfernen Sie lose Haare mit 70 % Ethanol-getränkter Gaze. Verwenden Sie dann eine kleine gebogene Pinzette und eine Schere, um den Bauch zu öffnen.

Identifizieren Sie die epigastrischen Gefäße und öffnen Sie das Peritoneum in der Region der Linea alba, um die Gefäße zu schützen. Tragen Sie ein paar Tropfen vorgewärmte Kochsalzlösung in die Bauchhöhle auf, um das Gewebe feucht zu halten, gefolgt von einer retroorbitalen Injektion von 50 Mikrolitern Rhodamin 6G, um die zirkulierenden Blutzellen zu markieren. Legen Sie dann die Maus in eine 10 Zentimeter große Petrischale, veräußern Sie eine Ileumschleife und verabreichen Sie die vorgewärmte Kochsalzlösung alle zwei Minuten, um das Gewebe feucht zu halten.

Um die Entzündungsreaktion intravitalmikroskopisch sichtbar zu machen, platzieren Sie die Maus unter dem Mikroskop und bringen Sie eine Mesenterialvene mit einem Durchmesser von 200 bis 300 Mikrometern und möglichst wenig sichtbarem umgebendem Fett ins Blickfeld.

Zeichnen Sie mit der entsprechenden Mikroskopsoftware die Wechselwirkungen zwischen Blutzellen und Endothel für 1 Minute in 4 verschiedenen Venen pro Maus auf. Um dann die Zell-zu-Zell-Reaktionen zu analysieren, bestätigen Sie die stabilen und interindividuellen Blutflussbedingungen.

Um die Anzahl der rollenden Leukozyten zu quantifizieren, ziehen Sie eine vertikale Linie durch die Vene und zählen Sie manuell alle Leukozyten, die diese Linie in 1 Minute überqueren. Um die Rollgeschwindigkeit zu bestimmen, ziehen Sie zwei vertikale Linien im Abstand von 50 Mikrometern durch die Vene und messen Sie die Zeit, die ein einzelner Leukozyt benötigt, um die Linien zu überqueren, während er stabil auf dem Endothel rollt.

Um die Leukozytenadhäsion zu messen, zeichnen Sie ein 200 x 200 Mikrometer großes Quadrat in die Vene. Zählen Sie dann manuell die fest haftenden Leukozyten, die 30 Sekunden lang keine sichtbare Bewegung innerhalb des Quadrats zeigen. Um die Thrombozyten-Leukozyten-Wechselwirkungen zu quantifizieren, zählen Sie schließlich manuell die Anzahl der an einen Leukozyten gebundenen Blutplättchen.

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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026