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Immunologie
0 Ansichten • 2:53 Min. • July 8th, 2025
Nehmen Sie zunächst ein Röhrchen mit Krebszellen in serumfreien Medien, um die Interferenz der Serumesterase während des Assays zu minimieren. Mit nicht fluoreszierendem Calcein AM-Farbstoff inkubieren.
Aktive intrazelluläre Esterasen hydrolysieren Calcein AM zu membranundurchlässigem fluoreszierendem Calcein-Farbstoff, der im Zytoplasma zurückgehalten wird.
Platten Calcein-gefärbte Krebszellen und Effektor-NK-Zellen in den Test-Wells, während die Kontroll-Wells nur calcein-gefärbte Krebszellen ohne NK-Zellen enthalten.
Die aktivierenden Zelloberflächenrezeptoren der NK-Zellen binden an aktivierende Liganden auf den Krebszellen und bilden eine Immunsynapse. Diese Bindung aktiviert die NK-Zell-Signalgebung und polarisiert die zytotoxischen Granula, die Perforine und Granzyme enthalten, zur Freisetzung in Richtung der Synapse.
Perforine bilden die Membranporen von Krebszellen, erleichtern den zellulären Eintritt von Granzymen und leiten die Apoptose ein. Die beeinträchtigte Membranintegrität führt zu einem Austritt von fluoreszierendem Calcein, wodurch die Fluoreszenz von Krebszellen reduziert wird.
Nehmen Sie Fluoreszenzbilder der Vertiefungen auf.
Eine geringere Anzahl fluoreszierender lebender Krebszellen in NK-zellhaltigen Vertiefungen als in Kontrollvertiefungen deutet auf eine NK-Zell-vermittelte Zytotoxizität gegenüber Krebszellen hin.
Um die NK-Zell-vermittelte Zytotoxizität mit Calcium-AM zu bewerten, werden die Zellen nach dem Züchten menschlicher Leberkrebszelllinienzellen auf eine Konfluenz von 70 % bis 80 %, wie gezeigt, in 3 Millilitern serumfreiem DMEM resuspendiert und die Zellen 30 Minuten lang bei Raumtemperatur mit 1,5 Mikrolitern 10 millimolare Calcium-AM-Lösung markiert. Am Ende der Inkubation sammeln Sie die Zellen durch Zentrifugation und waschen Sie die Zellen zweimal mit 5 Millilitern PBS pro Waschgang.
Resuspendieren Sie die Zellen in einer Konzentration von 1 x 105 Zellen pro Milliliter Kulturmedium und geben Sie 100 Mikroliter Zellen in dreifacher Ausfertigung pro Behandlungsbedingung in jede Vertiefung einer 96-Well-Platte. Geben Sie anschließend 1 x 105 humane NK-Zellen in 100 Mikrolitern Kulturmedium in jede Vertiefung der Zielzellen und legen Sie die Platte für vier Stunden in den Zellkultur-Inkubator.
Nach Beendigung der Inkubation nehmen Sie mindestens 10 verschiedene Bildfelder der Calcium-AM-positiven Zellen für jedes Replikat jeder Behandlungsbedingung an einem Fluoreszenzmikroskop mit einer 10-fachen Vergrößerung auf. Berechnen Sie dann die prozentuale Zytotoxizität anhand der Formel.
In diesem Artikel wird eine Methode zur Beurteilung der von NK-Zellen vermittelten Zytotoxizität gegenüber Krebszellen unter Verwendung des Calcein-AM-Farbstoffs beschrieben. Das Verfahren beinhaltet die Inkubation von Krebszellen mit NK-Zellen und die Messung der Fluoreszenz zur Bestimmung zytotoxischer Effekte.
Dieser Test ermöglicht die quantitative Beurteilung der von natürlichen Killerzellen vermittelten Zytotoxizität, einem zentralen Mechanismus bei der Validierung von Zielstrukturen in der Immuno-Onkologie. Durch die Messung des Verlusts der Calcein-AM-Fluoreszenz in Krebszellen liefert er einen funktionellen Endpunkt zur frühzeitigen Absicherung von immuntherapeutischen Wirkstoffkandidaten in der Entdeckungsphase. Die Methode unterstützt die Vorhersagbarkeit von Therapien mit natürlichen Killerzell-Bindern und zytokinbasierten Ansätzen, indem sie die Zielstrukturenbindung mit apoptotischen Ergebnissen verknüpft.
Der Test fügt sich in die Entdeckungskette der Immuno-Onkologie von der Target-Validierung bis zur Lead-Optimierung ein und liefert funktionelle Daten nach Target-Bindungsassays, aber vor In-vivo-Wirksamkeitsstudien.
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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026