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Nehmen Sie Splenozyten, die von roten Blutkörperchen erschöpft sind, in einem Puffer ein, der einen zellpermeierten Kalzium-empfindlichen Fluoreszenzfarbstoff, Indo-1 AM, enthält.
Intrazelluläre Esterasen spalten Indo-1 AM in membranundurchlässiges Indo-1, das an Kalziumionen bindet und das Fluoreszenzsignal von Indo-1 von blau nach violett verändert.
Einführung von Fluorophor-konjugierten antigenspezifischen Antikörpern, die spezifisch an die jeweiligen Antigene auf Zellen binden.
Identifizieren Sie mit Hilfe der Durchflusszytometrie fluorophormarkierte B-Zellen und messen Sie ihr Indo-1-Violett-Blau-Fluoreszenzverhältnis.
Behandeln Sie nun die Zellen mit antigenen Liposomen, die aus IgM-Fab-Fragmenten bestehen, die an Liposomen-Doppelschichten konjugiert sind.
Die B-Zell-Rezeptoren binden an die Liposomen-gekoppelten Antigene, aktivieren die zugehörigen zytoplasmatischen Tyrosinkinasen und lösen die Aktivierung der Phospholipase-C-gamma-2-Aktivierung aus.
Aktivierte Phospholipase C spaltet das Membranphospholipid Phosphatidylinositol 4,5-bisphosphat und erzeugt zweite Botenstoffe, einschließlich Inositol 1,4,5-trisphosphat oder IP3.
IP3 bindet an IP3-gesteuerte Kalziumkanäle auf dem endoplasmatischen Retikulum und setzt Kalziumionen in das Zytoplasma frei.
Diese Kalziumionen binden die ungebundenen Indo-1-Moleküle und erhöhen so die violette Fluoreszenz
.
Ein höheres Indo-1-Violett-Blau-Fluoreszenzverhältnis in markierten B-Zellen bestätigt deren erfolgreiche Aktivierung durch antigene Liposomen.
Um die B-Zell-Reaktion auf die Aktivierung antigener Liposomen zu überwachen, resuspendieren Sie 1,5 x 107 Splenozyten in Calciumfluss-Ladepuffer und fügen Sie den Zellen 1,5 mikromolare Indo-1 hinzu, wobei Sie die Lösung im Röhrchen mehrmals invertieren, um sie zu mischen. Nach einer 30-minütigen Inkubation im Wasserbad bei 37 Grad Celsius vor Licht geschützt, fügen Sie das 5-fache Volumen an Calciumflussmittel-Ladepuffer hinzu und zentrifugieren Sie die Indo-1-markierten Zellen.
Für das B-Zell-Gating färben Sie die Zellen mit Anti-CD5- und Anti-B220-Antikörpern in 0,5 Millilitern Ladepuffer bei 4 Grad Celsius für 20 Minuten lichtgeschützt. Am Ende der Inkubation waschen Sie die Zellen in frischem Calciumflussmittel-Ladepuffer und resuspendieren Sie das Pellet bei 1 bis 2 x 107 Zellen pro Milliliter frischem Kalziumflussmittel-Laufpuffer zur Lagerung auf lichtgeschütztem Eis bis zur Analyse.
Geben Sie als Nächstes 0,5 Milliliter Zellen in ein verschlossenes 5-Milliliter-Polystyrolröhrchen mit rundem Boden und erwärmen Sie die Zellen in einem Wasserbad auf 37 Grad Celsius. Übertragen Sie das Röhrchen nach 3 bis 5 Minuten in eine 37 Grad Celsius heiße Wassermantelkammer, die mit einem Umlaufwasserbad verbunden ist, und führen Sie das Röhrchen in den Wassermantel des Durchflusszytometers.
Nachdem Sie 5.000 bis 10.000 Ereignisse pro Sekunde gesammelt haben, lassen Sie die Zellen 15 bis 30 Sekunden lang stabilisieren und starten Sie die Datenerfassung erneut, indem Sie die Daten mindestens 10 Sekunden lang sammeln, um eine Hintergrundmessung zu erstellen. Entfernen Sie nach 10 Sekunden schnell das Röhrchen aus dem Durchflusszytometer und fügen Sie die entsprechende experimentelle Konzentration antigener Liposomen hinzu. Pulsieren Sie dann die Zellen und lesen Sie das Röhrchen auf dem Zytometer für weitere 3 bis 5 Minuten ab.