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Nehmen wir serielle Verdünnungen eines Antikörpers, der auf das Influenzavirus-Hämagglutinin (HA) abzielt, ein Glykoprotein, das aus einem kugelförmigen Kopf und einem Stiel besteht.
Geben Sie die Verdünnungen auf transfizierte Säugetierzellen, die oberflächengebundenes HA exprimieren. Die Antikörper binden an die HA-Stielregionen und bilden Immunkomplexe.
Einführung von gentechnisch veränderten T-Zellen, die Fc-Rezeptoren exprimieren und einen Luciferase-Reporter unter der Kontrolle des Transkriptionsfaktors NFAT kodieren.
Während der Inkubation bindet der HA-gebundene Antikörper an den Fc-Rezeptor, während der HA-Kopf an Sialinsäure bindet, was die Aktivierung der T-Zellen auslöst und die zytosolische Kalziumkonzentration erhöht.
Diese Aktivierung initiiert eine Signalkaskade, die zur Dephosphorylierung von NFAT führt und seine nukleare Translokation auslöst.
NFAT bindet an seine Reaktionselemente im Genom und treibt die Luciferase-Expression voran.
Fügen Sie ein zellpermeables biolumineszierendes Substrat hinzu. Luciferase oxidiert das Substrat und erzeugt ein Signal.
Eine verminderte Lumineszenz mit abnehmender Antikörperkonzentration bestätigt die HA-Stiel-spezifische Antikörper-vermittelte T-Zell-Aktivierung.
Um die Fähigkeit spezifischer Antikörper von Interesse zu beurteilen, auf die Hämagglutinin-exprimierenden Zellen abzuzielen, wird der Überstand der viral infizierten Zellkulturen durch 25 Mikroliter antikörperabhängiges zellvermitteltes Zytotoxizitäts- (ADCC) Testmedium ersetzt.
Führen Sie anschließend in einer separaten 96-Well-Platte 4-fache Verdünnungen der interessierenden Antikörper in dreifachem und frischem ADCC-Medium durch, beginnend bei 10 Mikrogramm pro Milliliter gemäß dem Schema, und achten Sie darauf, den Hintergrund und keine Antikörperkontrollen einzubeziehen.
Wenn der gesamte Antikörper verdünnt ist, werden 25 Mikroliter des verdünnten Antikörpers in die entsprechenden Vertiefungen in der experimentellen Zellplatte überführt und die Platte in den Zellkultur-Inkubator gelegt. Nach 15 Minuten wird 7,5 mal 10 zu den 4. modifizierten Effektor-Jurkat-Zellen hinzugefügt und der entsprechende Fc-Rezeptor pro Vertiefung in 25 Mikrolitern ADCC-Medium exprimiert, um ein Endvolumen von 75 Mikrolitern ADCC-Medium pro Vertiefung zu erhalten.
Stellen Sie die Platte für 6 Stunden in den Zellkultur-Inkubator zurück und tauen Sie den Luciferase-Substratpuffer in der letzten Stunde der Inkubation in einem 37 Grad Celsius heißen Wasserbad auf. Wenn der Puffer fertig ist, fügen Sie 75 Mikroliter Luciferase-Substratpuffer zu allen Vertiefungen mit Ausnahme der Hintergrundkontrollvertiefung hinzu und lesen Sie die Platte auf einem Luminometer ab. Anschließend kann die Falteninduktion der antikörperabhängigen zellvermittelten Zytotoxizität in den transfizierten oder infizierten Zellkulturen berechnet werden.