Eine Affinitätschromatographie-Technik zur Aufreinigung von monoklonalen Antikörpern

0 Ansichten3:03 Min. • July 8th, 2025

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Nehmen Sie eine Affinitätschromatographiesäule, die Agarosekügelchen enthält, die an Protein A, ein Antikörper-bindendes Protein, konjugiert sind.

Fügen Sie einen Bindungspuffer mit neutralem pH-Wert hinzu, um die Säule auszugleichen.

Laden Sie den Kulturüberstand aus einer Antikörper produzierenden Zellkultur, die monoklonale Antikörper enthält und zelluläre Proteine kontaminiert.

Der neutrale pH-Wert erleichtert die Bindung von Protein A an die Fc-Region der Antikörper, während die Verunreinigungen durchfließen.

Messen Sie die UV-Absorption der Strömung, um ein Chromatogramm zu erstellen. Eine hohe Extinktion während der Probenbeladung deutet auf ungebundene Proteine im Durchfluss hin.

Waschen Sie die Säule mit dem Bindepuffer, um unspezifisch gebundene Verunreinigungen zu entfernen.

Fügen Sie einen Elutionspuffer mit niedrigem pH-Wert hinzu, um die Interaktion zwischen Protein A und Antikörpern zu stören. Sammeln Sie die eluierten Antikörper, indem Sie den Absorptionspeak überwachen.

Neutralisieren Sie den pH-Wert, um einen Abbau der Antikörper zu verhindern, und übertragen Sie ihn in einen Zentrifugalfilter.

Zentrifugieren Sie, um die Antikörper zu konzentrieren, und resuspendieren Sie sie in einem Puffer für nachgeschaltete Assays.

Nachdem Sie die Puffer vorbereitet und das FPLC-System gemäß dem Textprotokoll initialisiert haben, verwenden Sie den Methodeneditor, um die Ausführungsschritte wie folgt einzurichten. Äquilibrieren Sie das System mit fünf Spaltenvolumina oder CV Bindungspuffer.

Laden Sie die Probe auf die Säule, sammeln Sie den Probenfluss und verwenden Sie dann fünf CV Bindungspuffer, um das System zu waschen. Verwenden Sie fünf CV Elutionspuffer, um die Säule durch isokratische Fraktionierung zu eluieren. und sammeln Sie die gereinigten Antikörperproben als Fraktionen mit dem Fraktionssammler.

Äquilibrieren Sie schließlich das System mit fünf CV Bindungspuffer und sammeln Sie den Durchfluss in einem Abfallbehälter. Sobald die Einrichtung der Methode abgeschlossen ist, geben Sie das Volumen des konditionierten Mediums an, das auf die Spalte angewendet werden soll, und speichern Sie die Methode.

Tauchen Sie anschließend den Schlauch der Probenpumpe in das Gefäß mit dem konditionierten Medium. Bereiten Sie dann einen separaten Behälter vor, um den Probenfluss über den angegebenen Auslassschlauch zu sammeln. Setzen Sie die Sammelröhrchen in den Fraktionssammler ein und fügen Sie jedem Auffangröhrchen Neutralisationspuffer hinzu. Öffnen Sie im Systemsteuerungsmodul der Software die zu verwendende Methode. Klicken Sie dann auf Start, um die Ausführung zu starten.

Wenn die Reinigung abgeschlossen ist und das Auswertungsmodul verwendet wird, überprüfen Sie das resultierende Chromatogramm. Kombinieren Sie alle proteinhaltigen Fraktionen in einem Röhrchen und verwenden Sie dann PBS und eine Zentrifugalfiltervorrichtung mit einem Cutoff-Wert von 30 Kilodalton, um die Probe zu konzentrieren und den Pufferaustausch durchzuführen. Verwenden Sie abschließend den BCA-Assay, um die Antikörperkonzentration gemäß den Anweisungen des Herstellers zu messen.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026