Ein Peptid-Array-basierter Nachweis von Anti-Donor-HLA-Alloantikörpern bei Organempfängern

0 Ansichten3:15 Min. • July 8th, 2025

Nehmen Sie ein Peptidarray, das aus dem humanen Leukozytenantigen oder der HLA-Sequenz eines Organspenders gewonnen wurde, die aus verschiedenen Peptiden auf der Zellulosemembran besteht.

Jedes Peptid trägt mindestens eine Aminosäure-Diskrepanz zwischen der HLA-Sequenz des Spenders und des Empfängers, was ein potenzielles Epitop für eine Antikörper-vermittelte Organabstoßung darstellt.

Mit einem Blockierungspuffer behandeln, um eine unspezifische Antikörperinteraktion zu verhindern.

Fügen Sie das nach der Organtransplantation gesammelte Empfängerserum hinzu, das Alloantikörper enthält.

Diese Antikörper, die gegen das HLA des Spenders gebildet werden, binden an ihr Zielepitop.

Fügen Sie einen Peroxidase-konjugierten Sekundärantikörper hinzu, der an den Alloantikörper bindet.

Fügen Sie chemilumineszierendes Substrat und Wasserstoffperoxid hinzu. Die Peroxidase verwendet Wasserstoffperoxid, um das Substrat zu oxidieren und Licht zu emittieren.

Scannen Sie die Membran, um ein Bild zu erhalten.

Fügen Sie einen Puffer hinzu, um die gebundenen Antikörper zu entfernen. Erneute Sonde mit Empfängerserum vor der Transplantation und Aufnahme eines Bildes.

Im Vergleich zum Bild vor der Transplantation deuten dunkle Flecken auf dem Bild nach der Transplantation auf spenderspezifische HLA-Epitope hin, die eine Alloantikörper-Reaktivität auslösen.

Wenn die Arrays synthetisiert wurden, blockieren Sie die Membranen mit 20 Millilitern 5 % fettfreier Milch, gelöst in Tris-gepufferter Kochsalzlösung mit 0,1 % Tween 20 oder TBST für die entsprechende Inkubationszeit unter Schaukeln. Waschen Sie die Membran anschließend dreimal mit 20 Millilitern frischem TBST für 5 Minuten pro Waschgang, gefolgt von einer Inkubation mit 20 Mikrolitern rohem Empfängerserum in 2,5 % Milch in TBST für 2 bis 3 Stunden bei Raumtemperatur.

Waschen Sie die Membran am Ende der Inkubation dreimal für 10 Minuten pro Waschgang und inkubieren Sie die Membranen zwei Stunden lang mit Ziegen-Anti-Human-Meerrettich-Peroxidase-konjugiertem IgG-Sekundärantikörper.

Entfernen Sie den ungebundenen Sekundärantikörper mit drei 10-minütigen Waschgängen in TBST und entwickeln Sie die Membranen in 5 Millilitern frisch zubereiteter Luminollösung plus 5 Millilitern Peroxidlösung. Nach einer Minute visualisieren Sie die verstärkten Chemilumineszenzsignale auf einem geeigneten Imager.

Nachdem Sie die entwickelten Bilder gespeichert haben, inkubieren Sie die Membranen mit 20 Millilitern handelsüblichem Stripping-Puffer bei 37 Grad Celsius für 20 Minuten, gefolgt von drei 10-minütigen Wäschen in TBST. Blockieren Sie dann die Membranen, sondieren Sie sie erneut und visualisieren Sie sie, wie gerade mit einer Serumprobe desselben Patienten gezeigt, die zu einem anderen Zeitpunkt entnommen wurde.

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Analyse der Histon-Antikörper-Spezifität mit Peptid-Microarrays

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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026