Eine Technik zum Nachweis cyanobakterieller Stämme mit Hilfe eines Antikörper-Microarray-Chips

0 Ansichten3:31 Min. • July 8th, 2025

Beginnen Sie mit einem Antikörper-Microarray-Chip, der mit spezifischen Antikörpern bedruckt ist.

Jeder Spot enthält einen einzigartigen Antikörper gegen einen bestimmten Cyanobakterienstamm.

Behandeln Sie den Chip mit einem Blockierungspuffer, um unspezifische Wechselwirkungen zu minimieren.

Bauen Sie den Chip in eine Hybridisierungskassette mit mehreren Vertiefungen ein.

Geben Sie eine Umweltprobe in die Vertiefungen und inkubieren Sie sie unter optimierten Bedingungen.

Die Probe enthält verschiedene Bakterien, darunter verschiedene Cyanobakterienstämme, die mit spezifischen Antikörpern auf dem gedruckten Chip interagieren. Waschen Sie den Chip, um die ungebundenen Bakterien zu entfernen.

Es wird ein Antikörpergemisch hinzugefügt, das fluorophormarkierte Antikörper gegen Cyanobakterienstämme enthält, die mit spezifischen Antigenen auf den jeweiligen Cyanobakterienzellen interagieren. Entfernen Sie ungebundene Antikörper.

Zerlegen Sie die Kassette, waschen und trocknen Sie den Chip und scannen Sie ihn.

Die Fluoreszenz an bestimmten Stellen bedeutet das Vorhandensein bestimmter Cyanobakterienstämme in der Probe.

Richten Sie den Objektträger in einer 3 x 8 Well-Microarray-Hybridisierungskassette gemäß den Anweisungen des Anbieters ein. Alternativ können Sie nach der Modifikation des Antikörper-Druckmusters eine maßgeschneiderte Kassette einrichten, wie die hier gezeigte, oder einfach Abdeckfolien für das Setup verwenden.

Nach dem Zusammenbau von Objektträger und Kassette pipettieren Sie bis zu 50 Mikroliter jedes Probenextrakts oder verdünnen Sie ihn in Extraktionsinkubationspuffer in jede Vertiefung der Kassette. Alternativ können Sie die Proben in andere Inkubationsgeräte laden oder einfach Objektträger verwenden.

Pipettieren Sie als Blindkontrolle 50 Mikroliter TBST-RR-Puffer in mindestens zwei separate Vertiefungen der Kassette. Inkubieren Sie die Proben 1 Stunde lang bei Raumtemperatur und mischen Sie sie alle 15 Minuten durch Pipettieren oder inkubieren Sie sie 12 Stunden lang bei 4 Grad Celsius.

Um die Microarrays zu waschen, legen Sie die Kassette ab und klopfen Sie sie vorsichtig auf sauberes, saugfähiges Papier. Waschen Sie dann die Vertiefungen, indem Sie jeweils 150 Mikroliter Extraktionsinkubationspuffer hinzufügen, und entfernen Sie den Puffer, indem Sie wie zuvor auf saugfähiges Papier klopfen. Wiederholen Sie die Wäsche noch dreimal.

Geben Sie in jede Vertiefung 50 Mikroliter des fluoreszierenden Antikörpergemisches, das die 17 Antikörper des Anti-Cyanobakterienstamms enthält. Inkubieren Sie die Proben 1 Stunde lang bei Umgebungstemperatur oder 12 Stunden lang bei 4 Grad Celsius.

Um die Microarrays zu waschen, setzen Sie die Kassette vorsichtig ab und klopfen Sie sie vorsichtig auf sauberes, saugfähiges Papier. Fügen Sie dann 150 Mikroliter Extraktionsinkubationspuffer hinzu, bevor Sie ihn durch Klopfen auf ein Papiertuch entfernen. Wiederholen Sie den Waschgang dreimal. Zerlegen Sie dann die Kassette und tauchen Sie den Objektträger für eine schnelle Spülung in 0,1x PBS-Lösung. Zentrifugieren Sie schnell wie zuvor, um den Objektträger zu trocknen.

Scannen Sie den Objektträger mit einem Fluoreszenzscanner auf Fluoreszenz bei maximaler Emissionsspitze für dunkelroten Fluoreszenzfarbstoff. Nehmen Sie mehrere Bilder der Microarrays mit unterschiedlichen Scanparametern auf, indem Sie den Verstärkungswert ändern.

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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026