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Entnehmen Sie drei Proben von neuronalen Kulturen des Hippocampus auf Deckgläsern.
Einführung von Primärantikörpern zur Markierung der oberflächenexprimierten Glutamatrezeptoren.
Der zweiten und dritten Probe wird ein konditioniertes Medium zugesetzt, um die Endozytose der Antikörper-gebundenen Rezeptoren zu induzieren.
Fügen Sie bei der dritten Probe Fab-Fragmente hinzu, um Epitope auf den nicht endozytierten Antikörpern zu blockieren.
Führen Sie einen Inhibitor ein, um die Rezeptorendozytose zu blockieren und gleichzeitig das Rezeptorrecycling an die Oberfläche zu ermöglichen.
Fixieren Sie in allen Proben die Zellen und fügen Sie eine Blockierungslösung hinzu, um eine unspezifische Markierung zu verhindern.
Einführung von Fluorophor-markierten Sekundärantikörpern zur Markierung der primären Antikörper auf den oberflächengebundenen Rezeptoren, einschließlich der recycelten.
Permeabilisieren Sie die Zellmembranen.
Geben Sie den Primärantikörper erneut in die erste Probe, um die bereits vorhandenen endozytierten Rezeptoren zu markieren.
Führen Sie allen Proben einen anderen Fluorophor-markierten Sekundärantikörper zu, um die endozytierten rezeptorgebundenen Primärantikörper zu markieren, wobei zwischen endozytierten und oberflächengebundenen Rezeptoren unterschieden wird.
Quantifizieren Sie mit einem konfokalen Mikroskop die oberflächenexprimierten, endozytierten und recycelten Rezeptoren in den verschiedenen Behandlungen.
Um diesen Vorgang zu starten, übertragen Sie die Deckgläser mit der Zellseite nach oben in eine mit Paraffinfolie bedeckte Schale, um Reagenzien zu sparen und die Manipulation zu erleichtern. Bewahren und pflegen Sie konditionierte Medien bei 37 Grad Celsius für Inkubations- und Waschschritte.
Die Zellen werden mit Primärantikörpern inkubiert, die in konditionierten Medien bei Raumtemperatur 15 Minuten lang verdünnt sind. Danach wird das antikörperhaltige Medium mit einer Vakuumpipette vorsichtig abgesaugt und die Zellen dreimal mit konditioniertem Medium gewaschen.
Wenn Sie die
Expression von Oberflächen- und intrazellulären Rezeptoren untersuchen, fixieren Sie die Zellen nach diesem Schritt mit Paraformaldehyd, wie im Textprotokoll beschrieben. Bewahren Sie die Zellen in konditionierten Medien ohne Antikörper auf und bringen Sie sie bei 37 Grad Celsius in den Inkubator zurück, um eine Internalisierung zu ermöglichen. Wenn Sie den Internalisierungsprozess untersuchen, fixieren Sie die Zellen nach diesem Schritt mit Paraformaldehyd, wie im Textprotokoll beschrieben.
Um die Epitope auf dem primären Antikörper zu blockieren, die an die oberflächenexprimierten Rezeptoren gebunden sind, die nicht internalisiert wurden, inkubieren Zellen mit unkonjugierten Fab-Anti-IgG-Antikörperfragmenten, die in konditionierten Medien 20 Minuten lang bei Raumtemperatur verdünnt wurden. Waschen Sie die Zellen danach dreimal mit konditionierten Medien. Inkubieren Sie die gewaschenen Vertiefungen mit konditionierten Medien mit 80 mikromolaren Dynasoren bei 37 Grad Celsius, um das Recycling internalisierter Rezeptoren zu ermöglichen.
Nachdem Sie die Modifikationen an lebenden Zellen abgeschlossen haben, waschen Sie die Zellen einmal mit PBS+. Geben Sie eine Lösung aus 4 % Paraformaldehyd und 4 % Saccharose in PBS zu den Zellen und inkubieren Sie sie 7 bis 8 Minuten lang in einem Abzug bei Raumtemperatur, um die Zellen zu fixieren. Waschen Sie dann die Zellen dreimal mit normalem PBS. Geben Sie eine Lösung aus 10% normalem Ziegenserum in PBS in die Zellen und inkubieren Sie sie 30 Minuten lang bei Raumtemperatur, um unspezifische Bindungsstellen zu blockieren.
Als nächstes inkubieren Sie die Zellen mit fluoreszenzmarkierten Sekundärantikörpern, die in 3 % NGS in PBS verdünnt sind, bei Raumtemperatur für eine Stunde, um primäre Antikörper-markierte Rezeptoren zu markieren. Waschen Sie danach die Zellen dreimal mit PBS.
Um mit der Markierung der intrazellulären Rezeptoren zu beginnen, fügen Sie eine Lösung von 0,25% Triton-X in PBS hinzu und inkubieren Sie 5 bis 10 Minuten bei Raumtemperatur, um die Zellen zu permeabilisieren. Dann mit 10% NGS bei Raumtemperatur 30 Minuten lang blockieren. Wenn Sie die Oberfläche im Vergleich zur Gesamtmasse untersuchen, inkubieren Sie die Zellen mit demselben Primärantikörper, der zuvor verwendet wurde, verdünnt in 3 % NGS in PBS bei Raumtemperatur für eine Stunde und markieren Sie die intrazellulären Rezeptoren.
Waschen Sie anschließend die Zellen dreimal mit PBS. Markierung mit einem zweiten fluoreszenzmarkierten Sekundärantikörper, verdünnt in 3 % NGS in PBS bei Raumtemperatur für eine Stunde Waschen Sie danach die Zellen dreimal mit PBS. Legen Sie zunächst die Deckgläser vorsichtig mit der Zellseite nach unten auf 12 bis 15 Mikroliter des entsprechenden Eindeckmediums, um die Zellen zu montieren. Bilden Sie dann die Zellen mit dem entsprechenden konfokalen Mikroskop ab und analysieren Sie die Zellen wie im Textprotokoll beschrieben.