Messung der phagozytären Effizienz von Makrophagen mit Primaquin und photodynamischer Therapie

0 Ansichten3:45 Min. • December 22nd, 2025

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Beginnen Sie mit einer Multi-Well-Platte, die adhärente murine Makrophagen – oder phagozytäre Immunzellen – enthält.

Führen Sie eine Pilzzellsuspension von Cryptococcus ein, die mit Makrophagenrezeptoren interagiert und über Phagozytose internalisiert.

Das Phagosom verschmilzt mit dem Lysosom und bildet ein Phagolysosom. Das saure Milieu des Phagolysosoms begünstigt das Überleben und die Vermehrung von Pilzen.

Geben Sie eine hohe Konzentration von Primaquin – einem Photosensibilisator – in die Testvertiefungen, während der Kontrolle der Photosensibilisator fehlt. Inkubieren, um die Aufnahme von Primaquin durch Makrophagen zu erleichtern.

Setzen Sie die Platte ultraviolettem Licht für die photodynamische Behandlung oder PDT aus.

In der Testvertiefung bildet Primaquin radikalische Kationen, die mit molekularem Sauerstoff interagieren und reaktive Sauerstoffspezies (ROS) erzeugen.

ROS induzieren den Absterben von Pilzen, während antioxidative Enzyme von Makrophagen ROS neutralisieren und so Zellschäden verhindern.

Permeabilisieren Sie die Makrophagen und setzen Pilzzellen frei.

Verteilen Sie den verdünnten Zellinhalt auf selektiven Agarplatten, so dass sich unterschiedliche Pilzkolonien bilden.

Weniger Kolonien auf der Testplatte im Vergleich zur Kontrolle deuten auf eine erhöhte phagozytische Effizienz der Makrophagen aufgrund der photodynamischen Behandlung mit Primaquin hin.

Beginnen Sie mit einer Suspension einer murinen Makrophagen-Zelllinie in vollständigem RPMI 1640-Medium, wie im Textprotokoll erwähnt. Geben Sie 100 Mikroliter dieser Zellsuspension in die Vertiefungen einer sterilen 96-Well-Kulturplatte mit flachem Boden. Inkubieren Sie die Platte über Nacht in einem Inkubator.

Nehmen Sie die Platte am nächsten Tag aus dem Inkubator. Ersetzen Sie das verbrauchte Medium durch 100 Mikroliter frisches RPMI-1640 Medium. Geben Sie dann 100 Mikroliter Kryptokokken-Zellsuspension in die Kulturplatte mit den ausgesäten Makrophagen.

Um den photodynamischen Effekt zu untersuchen, bereiten Sie die gewünschten Arbeitskonzentrationen des Photosensibilisators vor. Geben Sie 100 Mikroliter Arbeitslösung in die Platte, die mit Makrophagen und Kryptokokkenzellen besiedelt ist.

Inkubieren Sie die Platte im Dunkeln, damit die Zellen mit dem Medikament reagieren können. Setzen Sie die Platten nach der Inkubation zwei Minuten lang UV-Licht aus.

Nach Beginn der photodynamischen Behandlung inkubieren Sie die Kulturplatten 18 Stunden lang. Entfernen Sie nach der Inkubation den Überstand und waschen Sie die Zellen mit 200 Mikrolitern Phosphatpufferlösung.

Geben Sie 300 Mikroliter 0,1 % Triton X-100 in die Vertiefungen und inkubieren Sie 10 Minuten lang bei Raumtemperatur.

Aspirieren Sie den Inhalt jeder Vertiefung und geben Sie ihn in einzelne sterile 1,5-Milliliter-Kunststoffröhrchen ab. Verdünnen Sie die Zellen 10-mal mit destilliertem Wasser und pipettieren Sie 50 Mikroliter der Verdünnung auf einzelne Hefe-Malz-Extrakt-Agarplatten.

Verwende eine Spreizplattenmethode, um einen konfluenten Rasen aus Zellen auf der Oberfläche der Agarplatte zu erzeugen. Inkubieren Sie die Platten 48 Stunden lang. Zählen Sie die koloniebildenden Einheiten auf den Agarplatten.

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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026