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Nehmen Sie serielle Verdünnungen von Antikörpern ein, die spezifisch für das humane Cytomegalievirus (HCMV) sind.
Bei der Zugabe von HCMV binden die Antikörper an das Glykoprotein B auf der Virushülle und neutralisieren das Virus.
Die Mischung auf humane Fibroblasten übertragen und inkubieren.
Ein Trimer-Glykoprotein-Komplex auf den nicht-neutralisierten Viren bindet an spezifische zelluläre Rezeptoren, löst die Glykoprotein-B-vermittelte Virus-Wirt-Membranfusion aus und setzt das genomische DNA-haltige Nukleokapsid im Inneren frei.
Das freigesetzte Genom gelangt in den Zellkern und kodiert für nukleär lokalisierte sofort frühe Proteine (IE).
Die Antikörper-Neutralisation verhindert das Eindringen von Viren in die Zellen.
Entfernen Sie die nicht internalisierten Viren. Mit Ethanol bei Minustemperaturen behandeln, um die Zellen zu fixieren und zu permeabilisieren.
Führen Sie einen primären Antikörper ein, der an die IE-Proteine bindet.
Fügen Sie einen Fluorophor-konjugierten Sekundärantikörper hinzu, der an den Primärantikörper bindet, und eine Fluoreszenzfärbung, die an die DNA bindet.
Erkennen Sie unter einem Mikroskop doppelt gefärbte Zellen, die mit Viren infiziert sind. Berechnen Sie den Prozentsatz der infizierten Zellen, um die Virusneutralisation bei den verschiedenen Antikörperkonzentrationen zu bestimmen.
Am Tag vor dem Experiment bereiten Sie die Zielzellen auf die Infektion vor, indem Sie Fibroblastenzellen, die in vollständigen Medien gezüchtet wurden, die aus DMEM bestehen, das mit 10 % FBS ergänzt ist, in einer sterilen 96-Well-Platte kultivieren.
Bereiten Sie nach 24 Stunden das Virus-Antikörper-Gemisch vor, indem Sie 90 Mikroliter verdünnte Antikörperlösung in die Vertiefungen einer frischen 96-Well-Platte geben. Bereiten Sie serielle Verdünnungen der Antikörperlösung unter Verwendung eines vollständigen Mediums vor.
Zusätzlich werden 60 Mikroliter der Viruslösung, vorverdünnt in vollständigen Medien, in jede antikörperhaltige Vertiefung gegeben, um verschiedene Konzentrationen der Virus-Antikörper-Mischungen zu erzeugen und zu inkubieren.
Um nun die Zielzellen zu infizieren, nehmen Sie die mit Fibroblasten besiedelte Platte. Geben Sie 100 Mikroliter unterschiedlicher Konzentrationen des Virus-Antikörper-Gemisches in die Zellen und inkubieren Sie die Zielplatte 24 Stunden lang.
Um die Virusinfektion mittels Immunfluoreszenz nachzuweisen, fixieren Sie die Zellen nach 24 Stunden mit absolutem Ethanol und inkubieren Sie sie in einem -20 Grad Celsius heißen Gefrierschrank. Fahren Sie nach der Fixierung mit den folgenden Schritten auf dem Labortisch fort.
100 μl des Primärantikörpers werden in alle Vertiefungen der Platte pipetiert. Stellen Sie die Platte eine Stunde lang bei Raumtemperatur.
Entfernen Sie die primäre Antikörperlösung aus den Vertiefungen. Geben Sie eine Mischung aus Fluorophor-konjugiertem Sekundärantikörper und DAPI-Lösung in alle Vertiefungen. Inkubieren Sie den Teller eine Stunde lang im Dunkeln und waschen Sie den Teller.
Um die Infektion zu quantifizieren, visualisieren Sie die Platte unter einem Mikroskop und nehmen Sie Bilder mit den blauen und roten Kanälen auf. Berechnen Sie den Prozentsatz der Infektion pro Well, wie im Textprotokoll beschrieben.