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Beginnen Sie mit einer gefesselten immungeschwächten NOD-Maus, der Immunzellen fehlen und die anfällig für Diabetes ist.
Dieser Maus wurden transgene Betazellen der Bauchspeicheldrüse vorinjiziert, die Insulin produzieren und Luciferase-Enzyme exprimieren.
Nehmen Sie eine Spritze mit vorbehandelten Splenozyten, die von einer diabetischen Maus stammen. Zu den Splenozyten gehören autoreaktive T-Zellen mit der Fähigkeit, die Insulinpeptide zu erkennen.
Verabreichen Sie diese Splenozyten in die Schwanzvene der Maus.
Die Splenozyten zirkulieren und erreichen die Bauchspeicheldrüse, wo die autoreaktiven T-Zellen die Insulinpeptide auf den Betazellen erkennen und aktiviert werden.
Diese aktivierten Zellen setzen zytotoxische Moleküle frei und leiten die Zerstörung der Betazellen durch Autoreaktivität ein.
Als nächstes injizieren Sie ein Luziferase-Substrat in das Bauchfell der Maus. Das Substrat diffundiert in dieser Region und gelangt in die Betazellen.
In den Zellen interagiert das Substrat mit den Luciferase-Enzymen und erzeugt Lumineszenz.
Mit einem biolumineszierenden Bildgebungssystem können Sie in regelmäßigen Abständen Bilder aufnehmen
Eine allmähliche Abnahme der Lumineszenz deutet auf die Zerstörung transgener Betazellen durch Autoreaktivität hin.
Erwärmen Sie den Körper der erwachsenen Empfängerin, NOD-scid-Mäuse, indem Sie eine Wärmelampe 5 bis 10 Minuten lang verwenden, um die Venen zu vasodilatieren. Resuspendieren Sie die Splenozytenlösung vor jeder Injektion. Für jede Maus ziehen Sie 100 Mikroliter der vorgewärmten Splenozytensuspension in die Spritze. Stellen Sie sicher, dass keine Luftblasen vorhanden sind.
Platzieren Sie als Nächstes die Maus in der Rückhaltevorrichtung, bevor Sie ihren Schwanz mit der nicht dominanten Hand erfassen. Lokalisieren Sie eine der beiden seitlichen Schwanzvenen. Drehen Sie den Schwanz bei Bedarf vorsichtig. Wischen Sie den Schwanz mit einem Desinfektionstuch ab, das 70 % Isopropylalkohol enthält.
Führen Sie die Nadel mit der dominanten Hand in einem spitzen Winkel in den mittleren Bereich des Schwanzes ein. Schieben Sie die Nadel mit der Fase nach oben einige Millimeter durch die Haut. Üben Sie dann leichten Druck auf die Spritze aus, um die Suspension der Splenozyten zu injizieren. Lassen Sie die Nadel beim Injizieren nicht weiter hinein- oder herausbewegen. Erfolgreiche Injektionen führen während der Injektion nicht zu einem Gegendruck und werden durch einen transparenten oder weißen Blutfluss unmittelbar nach der Injektion angezeigt.
Nach der Injektion lösen Sie die Nadel vorsichtig aus der Vene und üben mit einem Desinfektionstuch leichten Druck auf den Schwanz aus, bis die Blutung aufhört. Lösen Sie die Maus aus der Rückhaltevorrichtung und setzen Sie sie vorsichtig in einen frisch vorbereiteten Käfig um. Mindestens 5 Minuten vor der Bildgebung injizieren Sie der Maus intraperitoneal die entsprechende Dosierung von D-Luciferin-Lösung mit einer 1-Milliliter-Spritze und einer 26-Gauge-Nadel.
Nachdem Sie sich bei der Imaging-Software angemeldet haben, wählen Sie in der Systemsteuerung die Option Initialisieren. Um die Bilddaten automatisch zu speichern, klicken Sie auf Erfassung und dann auf Automatisch speichern in und erstellen Sie die entsprechenden Ordner auf dem Computer. Sobald das Gerät mit der Initialisierung fertig ist, stellen Sie die Belichtungszeit auf eine Minute ein.
Legen Sie die Maus mit gespreizten Gliedmaßen in Bauchlage auf das bildgebende Instrument und führen Sie den Kopf in den Nasenkegel. Drücken Sie die Maus vorsichtig flach, indem Sie mit beiden Händen auf die Mitte des Rückens drücken und dann die Hände nach außen und auseinander spreizen. Wählen Sie dann in der Imaging-Software die Option "Erfassen" aus, und notieren Sie alle relevanten Details des Experiments.