Differenzierung humaner induzierter pluripotenter Stammzellen in Neuronen auf Mikroelektroden-Arrays

0 Ansichten4:33 Min. • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nehmen Sie transduzierte humaninduzierte pluripotente Stammzellen oder hiPSCs, die Neurogenin-2 überexprimieren und durch das Antibiotikum Doxycyclin-induzierbares System angetrieben werden.

Übertragen Sie sie auf die mit Adhäsionsproteinen beschichteten aktiven Elektrodenbereiche in den Vertiefungen eines Multi-Well-Mikroelektrodenarrays.

Lassen Sie hiPSCs an den beschichteten aktiven Elektrodenbereichen anhaften.

Fügen Sie Medien hinzu, die mit Doxycyclin ergänzt sind, das die Überexpression von Neurogenin-2, einem neuronalen spezifischen Transkriptionsfaktor, induziert.

Neurogenin-2 löst molekulare Signalwege aus und führt zur Differenzierung von hiPSCs in neuronale Vorläuferzellen, während Medienbestandteile das Überleben der Zellen unterstützen.

Führen Sie Astrozyten in die Vertiefungen des Mikroelektrodenarrays ein, wo sie an der aktiven Fläche der Elektrode haften.

Ersetzen Sie Medien durch neurobasale Medien, die neurogene Wachstumsfaktoren, Doxycyclin und einen Zellwachstumshemmer enthalten.

Der Inhibitor verhindert die Proliferation von Astrozyten und eliminiert undifferenzierte hiPSCs.

Im Laufe der Zeit treiben anhaltende Neurogenin-2-Expressions- und Wachstumsfaktoren die Differenzierung der neuronalen Vorläuferzellen in Neuronen voran.

Ersetzen Sie außerdem Medien durch neurobasale Medien, die Serum enthalten, um das Überleben der Astrozyten zu gewährleisten.

Astrozyten sezernieren Wachstumsfaktoren, die die Reifung der Neuronen und die Synapsenbildung fördern und ein neuronales Netzwerk bilden.

Für die Sechs-Well-MEAs verdünnen Sie die Zellen, um eine Zellsuspension von 7,5 x 105 Zellen pro Milliliter zu erhalten. Aspirieren Sie das verdünnte Laminin aus den Sechs-Well-MEAs. Für die Sechs-Well-MEAs plattieren Sie die Zellen, indem Sie 100 Mikroliter Zellsuspension in den aktiven Elektrodenbereich in jedem Well geben.

Legen Sie anschließend die MEAs mit sechs Vertiefungen in einen befeuchteten Inkubator mit 37 Grad Celsius. Geben Sie nach zwei Stunden vorsichtig 500 Mikroliter des vorbereiteten E8-Mediums in jede Vertiefung der Sechs-Well-MEAs. Anschließend stellen Sie die Sechs-Well-MEAs über Nacht in einen befeuchteten 37 Grad Celsius Inkubator.

Am dritten Tag 0,05 % Trypsin-EDTA auf Raumtemperatur erwärmen. Erwärmen Sie DPBS in DMEM/F-12 mit 1% Penicillin-Streptomycin auf 37 Grad Celsius. Aspirieren Sie dann das verbrauchte Medium der Ratten-Astrozytenkultur. Waschen Sie die Kultur, indem Sie 5 Milliliter DPBS hinzufügen, und schwenken Sie sie vorsichtig herum.

Anschließend DPBS aspirieren und 5 Milliliter 0,05 % Trypsin-EDTA hinzufügen. Schwenken Sie das Trypsin-EDTA vorsichtig herum. Inkubieren Sie die Zellen dann 5 bis 10 Minuten lang in einem befeuchteten 37 Grad Celsius Inkubator. Prüfen Sie anschließend unter dem Mikroskop, ob sich die Zellen abgelöst haben.

Löse die letzten Zellen, indem du ein paar Mal auf den Kolben drückst. Dann werden 5 Milliliter DMEM/F-12 in den Kolben gegeben. Zerreiben Sie die Zellen vorsichtig im Kolben mit einer 10-Milliliter-Pipette. Sammeln Sie anschließend die Zellsuspension in einem 15-Milliliter-Röhrchen. Drehen Sie die Tube acht Minuten lang mit 200 g Mix

.

Danach aspirieren Sie den Überstand und resuspendieren die Zellen in 1 Milliliter DMEM/F-12. Bestimmen Sie die Anzahl der Zellen pro Milliliter mit einem Hämozytometer.

Fügen Sie als Nächstes 7,5 x 104 Astrozyten zu jeder Vertiefung der Sechs-Well-MEAs hinzu und fügen Sie 2 x 104 Astrozyten zu jeder Vertiefung der 24-Well-Platte hinzu. Inkubieren Sie die Zellen über Nacht in einem befeuchteten 37 Grad Celsius Inkubator.

11:22

Ein optogenetische Ansatz zur Abschätzung Bildung neuronaler Verbindungen in einer Co-Kultursystem

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

10:18

Dreidimensionale Quantifizierung der dendritischen Dornen von Pyramidenzellen aus humanen induzierten pluripotenten Stammzellen

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

11:52

Etablierung einer elektrophysiologischen Plattform zur Modellierung von ALS mit regionalspezifischen humanen pluripotenten Stammzell-abgeleiteten Astrozyten und Neuronen

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

10:47

Effiziente Ableitung von humanen neuronalen Vorläuferzellen und Neuronen aus pluripotenten humanen embryonalen Stammzellen mit Small Molecule Induction

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

07:27

Schnelle und effiziente Erzeugung von Neuronen aus menschlichen pluripotenten Stammzellen in einem Multititre Platte Format

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

04:22

Differenzierung von induzierten pluripotenten Stammzellen in neurale Vorläuferzellen

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

03:29

Differenzierung von künstlich hergestellten humanen induzierten pluripotenten Stammzellen in funktionelle Motoneuronen

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

02:05

Messung der elektrophysiologischen Aktivität neuronaler Netzwerke mit Hilfe von Mikroelektrodenarrays

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

06:40

Regie dopaminergen Neuron Differenzierung von humanen pluripotenten Stammzellen

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

09:20

Schnelle Neuronale Differenzierung von induzierten pluripotenten Stammzellen zur Messung der Netzwerkaktivität auf Micro-Elektroden-Arrays

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026