Stimulierung der neuronalen Zelldifferenzierung mit Gold-Nanostäbchen

0 Ansichten4:06 Min. • July 8th, 2025

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Beginnen Sie mit Nervenzellen, die in einem Zelldifferenzierungsmedium kultiviert werden.

Geben Sie Gold-Nanostäbchen in das Medium.

Inkubieren, damit die Zelle das Nanostäbchen durch einen Prozess namens Endozytose verschlingen kann.

Stimulieren Sie die Nanostäbchen mit einem Laser.

Der Laserstrahl regt die Oberflächenelektronen auf dem Nanostäbchen an. Die angeregten Elektronen kehren dann in den Grundzustand zurück und setzen Wärmeenergie frei.

Diese Hitze regt die Nervenzellen an, Projektionen zu produzieren, die von einem spezifischen Zytoskelettprotein namens βIII-Tubulin unterstützt werden.

Entfernen Sie das verbrauchte Medium.

Fixieren Sie die Zellen. Fügen Sie ein geeignetes Reinigungsmittel hinzu, um die Membran zu permeabilisieren.

Fügen Sie ein Blockierungsmittel hinzu, um die unspezifische Bindung von Antikörpern zu verhindern.

Markieren Sie die Zellen mit primären Antikörpern, die auf das βIII-Tubulin abzielen.

Fügen Sie fluoreszenzmarkierte Sekundärantikörper hinzu, die mit den Primärantikörpern interagieren.

Färben Sie den Zellkern mit einem blauen Fluoreszenzfarbstoff.

Beobachten Sie mit Hilfe der Epifluoreszenzmikroskopie rot gefärbte Zellen mit blauen Zellkernen.

Längliche Fortsätze der Zelle deuten auf die Differenzierung von Nervenzellen hin.

Die neuronalen Zellen NG108-15 werden in 10 Millilitern Zellkulturmedium in einem T75-Kolben gezüchtet und anschließend bei 37 Grad Celsius in befeuchteter Atmosphäre inkubiert. Wenn die Zellen zu 70 % bis 80 % zusammenfließen, wechseln Sie das Medium durch warmes, frisches Medium.

Danach lösen Sie die Zellen mechanisch, indem Sie vorsichtig auf den Boden des Konfluentenkolbens klopfen. Eine Zellsuspension wird fünf Minuten lang bei 600 g zentrifugiert und das Zellpellet in 2 Millilitern warmem Zelldifferenzierungsmedium resuspendiert. Dann säen Sie die Zellen in einer 96-Well-Platte mit 200 Mikrolitern Zelldifferenzierungsmedium aus.

Inkubieren Sie die Probe einen Tag lang bei 37 Grad Celsius. Fügen Sie am nächsten Tag die Gold-Nanostäbchenlösung hinzu und inkubieren Sie sie weitere 24 Stunden lang. Koppeln Sie bei diesem Verfahren den Laser mit einer Singlemode-Lichtwellenleiter und schließen Sie ihn mit einem FC-Stecker ab. Messen Sie die Ausgangsleistung des Lasers mit einem Standard-Leistungsmesser.

Befestigen Sie am Tag 3 der Nanostäbchen-Inkubation den FC-Stecker an der Vertiefung, bestrahlen Sie die Probe und die Steuerung 1 Minute lang bei Raumtemperatur in einer kontinuierlichen Welle mit unterschiedlichen Laserleistungen. Entfernen Sie an Tag 5 das Zelldifferenzierungsmedium aus der Probe und fixieren Sie es 10 Minuten lang mit 3,7 Vol.-% Formaldehydlösung.

Anschließend permeabilisieren Sie die Zellen 20 Minuten lang mit 0,1 % Volumen pro Volumen Triton X-100. Geben Sie anschließend 60 Minuten lang 3 % Gewicht pro Volumen BSA in die Probe, um die nicht umgesetzten Proteinbindungsstellen zu blockieren. Markieren Sie die Probe über Nacht bei 4 Grad Celsius mit Anti-Beta-3-Tubulin.

Am nächsten Tag inkubieren Sie die Zellen 90 Minuten lang im Dunkeln mit einem geeigneten Sekundärantikörper. Markieren Sie anschließend die Zellkerne 10 Minuten lang mit DAPI und bilden Sie die Probe mit Epifluoreszenz- oder Konfokalmikroskopie ab, wobei mindestens ein 20-faches Objektiv verwendet wird. Wählen Sie die Mikroskopfilter entsprechend dem Sekundärantikörper und wählen Sie den DAPI-Filter aus, um die Zellkerne sichtbar zu machen.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026