Präparation von Hirnschnitten mit einer NMDG-basierten protektiven Wiederherstellungsmethode

0 views • 3:59 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Beginnen Sie mit einem isolierten Gehirn. Tauchen Sie das Gehirn schnell in eine vorgekühlte künstliche Zerebrospinalflüssigkeit oder aCSF, um die Stoffwechselprozesse zu unterbrechen.

Das aCSF enthält NMDG, ein großes organisches Kation, das die Schädigung und den Tod von neuronalen Zellen reduziert.

Das aCSF enthält auch HEPES, das den pH-Wert und die Salzkonzentration aufrechterhält und Zellschwellungen und -schäden verhindert.

Übertragen Sie das Gehirn auf eine Petrischale, in der sich ein Filterpapier befindet.

Trimmen Sie das Gehirn, um die gewünschte Region zu erhalten.

Fixieren Sie den Hirnblock mit einem geeigneten Kleber im Probenhalter und betten Sie ihn in die Agarose ein.

Positionieren Sie den Probenhalter in der Aufschnittmaschine.

Füllen Sie den Behälter des Slicers mit dem vorgekühlten aCSF und belüften Sie die Lösung, um eine optimale Sauerstoffversorgung zu gewährleisten.

Besorge dir Abschnitte des Gehirnblocks.

Übertragen Sie die Schnitte in den vorgewärmten Liquor, um die Stoffwechselprozesse wieder in Gang zu bringen und die Schnitte zu erholen.

Das intakte Gehirn vorsichtig in das Becherglas mit vorgekühltem NMDG-HEPES aCSF schöpfen und das Gehirn etwa 1 Minute lang gleichmäßig abkühlen lassen. Übertragen Sie nun mit einem großen Spatel das Gehirn aus dem Becherglas auf die mit Filterpapier abgedeckte Petrischale.

Trimmen und montieren Sie das Gehirn entsprechend dem bevorzugten Schnittwinkel und der gewünschten Gehirnregion. Arbeiten Sie schnell, um einen längeren Sauerstoffmangel während der Handhabung zu vermeiden. Befestigen Sie anschließend den Hirnblock mit Klebekleber auf dem Probenhalter.

Ziehen Sie das innere Stück des Probenhalters zurück, um den Hirnblock vollständig nach innen zu ziehen. Gießen Sie dann die geschmolzene Agarose direkt in den Halter, bis der Gehirnblock vollständig mit Agarose bedeckt ist. Anschließend wird der vorgekühlte Zubehörkühlblock 10 Sekunden lang um den Probenhalter geklemmt, bis sich die Agarose verfestigt hat.

Setzen Sie den Probenhalter in die Aufnahme an der Schneidemaschine ein und überprüfen Sie die korrekte Ausrichtung. Füllen Sie anschließend das Reservoir mit dem restlichen vorgekühlten, sauerstoffhaltigen NMDG-HEPES aCSF aus dem 250-Milliliter-Becherglas und legen Sie für die Dauer des Schneidens einen Blasenstein in das Reservoir, um eine ausreichende Sauerstoffversorgung zu gewährleisten.

Stellen Sie als Nächstes das Mikrometer ein, um mit dem Vorschieben der in Agarose eingebetteten Gehirnprobe zu beginnen. Starten Sie den Slicer und stellen Sie die erweiterte Geschwindigkeit und Schwingungsfrequenz empirisch auf den gewünschten Pegel ein. Fahren Sie mit dem Vorschieben und Schneiden des Gewebes in 300-Mikrometer-Schritten fort, bis die gewünschte Gehirnregion vollständig geschnitten ist. Die Gesamtzeit für den Schneidevorgang sollte weniger als 15 Minuten betragen.

Für die erste NMDG-Rückgewinnung sammeln Sie nach Abschluss des Schnittvorgangs alle Scheiben mit einer abgeschnittenen Pasteurpipette aus Kunststoff und geben Sie sie in eine 34 Grad Celsius heiße Rückgewinnungskammer, die mit 150 Millilitern NMDG-HEPES aCSF gefüllt ist.

Das Timing des akuten Schritts zur Wiederherstellung von Hirnschnitten ist sehr wichtig, um ein Gleichgewicht zwischen morphologischer Erhaltung und funktioneller Wiederherstellung der elektrophysiologischen Eigenschaften jedes Neurons herstellen zu können.

07:23

Whole-Cell-Patch-Clamp-Aufnahmen in Hirnschnitten

Related Videos

0 Views

07:31

Vorbereitung von akuten menschlichen Hippocampusscheiben für elektrophysiologische Aufnahmen

Related Videos

0 Views

08:58

Minimierung der Hypoxie in Hippocampal Scheiben von erwachsenen und alternden Mäusen

Related Videos

0 Views

08:47

Vorbereitung von Gehirngewebe der Maus für Immunelektronenmikroskopie

Related Videos

0 Views

02:37

Mikroskopische Bildgebung von Neuronen in einem Mausgehirnschnitt mittels Golgi-Cox-Metallic-Färbung

Related Videos

0 Views

10:55

Bewertung der dendritischen Verzweigung im Gyrus dentatus des Hippocampus-Region an der Maus

Related Videos

0 Views

10:53

Vorbereitung der akuten Gehirnscheiben mit einem optimierten N-Methyl-D-Glucamine-schützende Recovery-Methode

Related Videos

0 Views

05:51

Intracerebroventricular und intravaskuläre Injektion von Viruspartikeln und Fluorescent Microbeads in die neonatale Gehirn

Related Videos

0 Views

12:27

Großflächige Rekonstruktionen und Independent, Unvoreingenommene Clustering Basierend auf Morphologische Metriken Klassifizieren Neurons in Selective Populations

Related Videos

0 Views

10:26

Imaging Neurone innerhalb Dickhirnschnitten Mit der Golgi-Cox-Methode

Related Videos

0 Views

Last updated: 1 August 2026