Untersuchung der Regeneration funktioneller Verbindungen zwischen Rückenmarksschnitten mit Hilfe eines Mehrelektrodenarrays

0 Ansichten3:52 Min. • July 8th, 2025

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Platzieren Sie ein Multi-Elektroden-Array (MEA) in einer Petrischale unter einem Stereomikroskop. Die MEA besteht aus Elektroden, die in einem Raster mit zwei getrennten Zonen angeordnet sind.

Geben Sie einen Tropfen Blutplasma in die MEA. Platzieren Sie zwei Rückenmarksschnitte aus Rattenembryonen mit den Bauchseiten zueinander.

Geben Sie eine Thrombinlösung ein, mischen Sie sie mit dem Plasma und inkubieren Sie. Thrombin bewirkt eine Plasmakoagulation und bildet ein biologisches Gerüst, das die Adhäsion der Scheiben auf dem MEA erleichtert.

Fügen Sie ein Nährmedium hinzu und inkubieren Sie es unter Rühren, wodurch die Bildung von Zellverbindungen zwischen den Scheiben gefördert und deren Verschmelzung bewirkt wird.

Führen Sie unter dem Stereomikroskop eine Läsion ein, indem Sie die Gewebeverbindungen zwischen den Scheiben durchtrennen. Fügen Sie ein Nährmedium hinzu und inkubieren Sie.

Während der Inkubation wachsen Neuronen über die Läsion, um die Scheiben zu verbinden.

Zeichnen Sie mit Hilfe einer Aufzeichnungskammer die elektrische Aktivität beider Rückenmarksschnitte auf, um ihre regenerierten funktionellen Verbindungen zu beurteilen.

Legen Sie eine Petrischale mit einem beschichteten Mikroelektrodenarray unter ein Stereomikroskop. Bringen Sie das Array in den Fokus und zentrieren Sie ein 6-Mikroliter-Tröpfchen Hühnerplasma auf dem Elektrodenarray. Schieben Sie mit einem kleinen Spatel vorsichtig zwei Rückenmarksabschnitte mit den Bauchseiten zueinander in das Plasmatröpfchen.

Fügen Sie als nächstes 8 Mikroliter Thrombin um das Hühnerplasma-Tröpfchen hinzu. Mischen und verteilen Sie dann mit der Pipettenspitze vorsichtig die Mischung aus Hühnerplasma und Thrombin. Kurz bevor das Hühnerplasma-Thrombin-Gemisch zu fadenziehend wird und zu gerinnen beginnt, saugen Sie die überschüssige Flüssigkeit an. Verschließen Sie dann die Petrischale und stellen Sie sie in eine befeuchtete Kammer. Stellen Sie die Kammer für etwa eine Stunde bei 37 Grad Celsius in einen Inkubator.

Geben Sie nach der Inkubation vorsichtig 10 Mikroliter Nährmedium in die Probe. Verschließen Sie die Petrischale und stellen Sie sie für weitere 45 Minuten in den Inkubator. Legen Sie dann jede der Multi-Elektroden-Array-Kulturbaugruppen in ein Rollenrohr und fügen Sie 3 Milliliter Nährmedium hinzu. Schließen Sie den Deckel fest und setzen Sie das Rollenrohr in die Walzentrommel ein. Drehen Sie die Trommel im Inkubator bei 37 Grad Celsius mit 1 bis 2 U/min.

Entfernen Sie mit einer sterilen Pinzette mit Gummispitze die Multi-Elektroden-Array-Kulturbaugruppen aus dem Rollenrohr und legen Sie sie unter einem Stereomikroskop in eine Petrischale. Bringen Sie das Gewebe in den Fokus und vergewissern Sie sich, dass die beiden Scheiben verschmolzen sind.

Halten Sie dann die Baugruppe ruhig und platzieren Sie eine Skalpellklinge in der Rille des Multielektrodenarrays in der Nähe der Gewebeschnitte. Halten Sie das Skalpell ziemlich waagerecht und heben Sie dann den Skalpellgriff nach oben, aber lassen Sie die Skalpellklinge so in der Rille des Arrays bleiben, dass die Klinge von der Basis zur Spitze rollt und das Gewebe durchschneidet, das die Rille bedeckt. Durchtrennen Sie bei Bedarf alle Gewebereste mit einer 25-Gauge-Nadelspitze. Arbeiten Sie nur im Bereich innerhalb der Rille und berühren Sie nicht die zarten Kanten.

Setzen Sie die Multi-Elektroden-Array-Kulturbaugruppen wieder in das Rollrohr ein und geben Sie 3 Milliliter frisches Nährmedium zu den Kulturen. Legen Sie dann das Rollenrohr wieder auf die Walzentrommel im Inkubator bei 37 Grad Celsius.

Montieren Sie eine Multi-Elektroden-Array-Kulturbaugruppe in einer Aufnahmekammer und tragen Sie etwa 500 Mikroliter extrazelluläre Lösung auf das Array auf. Montieren Sie dann die Baugruppe auf dem Mikroskop. Warten Sie 10 Minuten, bis sich das System stabilisiert hat, und zeichnen Sie dann 10 Minuten lang die grundlegende spontane Aktivität von jeder der Aktivitätserkennungselektroden auf.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026