Generierung kortikaler Interneuronen-Vorläufer aus embryonalen Stammzellen der Maus

0 views • 3:03 min • July 8th, 2025

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Nehmen wir embryonale Stammzellen der Maus, die in serumfreien Medien suspendiert sind, die niedermolekulare Inhibitoren enthalten.

Säen Sie die Zellen auf einer nicht adhärenten Kulturplatte, damit sie sich vermehren und zu dreidimensionalen Embryoidkörpern oder EBs aggregieren können.

Darüber hinaus blockieren die Inhibitoren nicht-neuronale Signalwege und induzieren die Differenzierung embryonaler Stammzellen in Richtung eines kortikalen neuronalen Schicksals.

Übertragen Sie die EBs in ein Röhrchen, zentrifugieren Sie und entfernen Sie den Überstand.

Resuspendieren Sie die EBs in einer Lösung, die einen Enzymcocktail und DNase enthält.

Die Enzyme dissoziieren die EBs in einzelne Zellen, während DNase kontaminierende DNA abbaut.

Fügen Sie serumfreie Medien hinzu, die Inhibitoren enthalten, um die enzymatische Aktivität zu stoppen, zentrifugieren Sie dann und entfernen Sie den Überstand, der Enzyme enthält.

Resuspendieren Sie die Zellen in Medien, die niedermolekulare Inhibitoren enthalten, und überführen Sie sie auf Kulturplatten, die mit Adhäsionsfaktoren beschichtet sind.

Die Zellen heften sich an die beschichtete Plattenoberfläche.

Die Inhibitoren verhindern den apoptotischen Zelltod und induzieren die zelluläre Differenzierung in kortikale Interneuron-Vorläuferzellen.

Beginnen Sie mit der Züchtung der Zellen als Embryoidkörper, indem Sie 75.000 Zellen pro Milliliter in KSRN2-Medien in die nicht adhärenten Gewebekulturschalen geben und bei 37 Grad Celsius inkubieren. Bereiten Sie sich auf DD1 auf die Zelllandung vor, indem Sie die mit Gewebekulturen behandelten Schalen mindestens eine Stunde lang oder über Nacht bei 37 Grad Celsius mit Poly-L-Lysin beschichten.

An DD2 aspirieren Sie das Poly-L-Lysin und beschichten die Platten über Nacht bei 37 Grad Celsius mit Laminin. Bei DD3 vor Beginn der EB-Dissoziation Laminin aspirieren und die Platten in einer Gewebekulturhaube vollständig trocknen lassen.

Anschließend werden die EBs mit dem Medium in ein 15-Milliliter-Röhrchen überführt und drei bis vier Minuten lang mit dem 15-fachen g zentrifugiert oder bis die EBs pelletiert sind. Aspirieren Sie das Medium und fügen Sie 3 Milliliter Zellablösungslösung hinzu, die DNase enthält. Inkubieren Sie die Probe dann 15 Minuten lang bei 37 Grad Celsius.

Schnippen Sie alle drei Minuten vorsichtig mit dem Schlauch, um die EB-Dissoziation zu unterstützen. Sobald die EBs nicht mehr sichtbar sind oder 15 Minuten verstrichen sind, fügen Sie 6 Milliliter KSRN2 hinzu, das DNase enthält, und zentrifugieren Sie fünf Minuten lang bei 200-fachem g. Dann plattieren Sie die Zellen in KSRN2, das LDN193189, XAV939 und den ROCK-Inhibitor Y27632 enthält, in einem Verhältnis von 4,5 bis 5 x 104 Zellen pro Quadratzentimeter.

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Last updated: 18 July 2026