Erzeugung und Pflege von Schnittkulturen aus humanem Glioblastomgewebe

0 Ansichten4:13 Min. • July 8th, 2025

Nehmen wir menschliches Glioblastomgewebe, einen primären Hirntumor, der aus Gliazellen stammt.

Waschen Sie das Tuch mit einem eiskalten Verarbeitungsmedium, um Blutreste zu entfernen.

Schneiden Sie das Gewebe in Stücke und legen Sie es in eine Einbettform mit geschmolzener Agarose.

Kühle die Form, damit die Agarose polymerisieren und eine stabile Gelmatrix bilden kann.

Entfernen Sie den Gewebeblock aus der Form und fixieren Sie ihn auf der Probenplatte eines Vibratoms.

Fügen Sie das eiskalte Verarbeitungsmedium hinzu, um den Block einzutauchen. Lassen Sie ein sauerstoffreiches Gasgemisch passieren, um das Medium zu belüften und die Lebensfähigkeit des Gewebes zu erhalten.

Teilen Sie das eingebettete Tumorgewebe in dünne Scheiben.

Übertragen Sie eine Scheibe in eine Petrischale mit dem eiskalten Verarbeitungsmedium, um die Gewebearchitektur zu erhalten.

Plattieren Sie dann die Gewebescheibe auf einem durchlässigen Membraneinsatz in einer Vertiefung, die ein Scheibenkulturerhaltungsmedium enthält.

Halten Sie die Scheibe unter physiologischen Bedingungen. Die Schnittkultur ist bereit für nachgelagerte Assays.

Beginnen Sie damit, leere PTFE-Kultureinsätze mit einer sterilen Pinzette in jede Vertiefung einer Sechs-Well-Platte zu platzieren, die 1 Milliliter Scheibenkulturerhaltungsmedium pro Vertiefung enthält. Wenn alle Einsätze hinzugefügt wurden, legen Sie die Platte in einen befeuchteten, wasserummantelten Gewebekultur-Inkubator bei 37 Grad Celsius und 5 % CO2.

Legen Sie anschließend die Tumorgewebestücke in eine Petrischale mit eiskaltem Verarbeitungsmedium und waschen Sie das Gewebe mit einer Pipette dreimal vorsichtig mit frischem Medium, um anhaftende rote Blutkörperchen zu entfernen. Schneiden Sie nach der dritten Wäsche die Tumorstücke mit einem Skalpell in etwa 3 x 3 x 10 Millimeter große Streifen, entfernen Sie vorsichtig alle anhaftenden Gefäße und vermeiden Sie nekrotisches oder kauterisiertes Gewebe

.

Wenn das gesamte Gewebe abgeschnitten ist, geben Sie 5 bis 7 Milliliter 37 Grad Celsius flüssige Agarose in eine 2 Kubikzentimeter große Kunststoffeinbettungsform und kühlen Sie die Agarose eine Minute lang auf einem Eisbett. Legen Sie 2 bis 4 Streifen Gewebe in die Agarose, wobei die Längsachse vertikal ausgerichtet ist, und lassen Sie die Gewebe nach dem Platzieren weitere 2 bis 5 Minuten auf Eis.

Wenn die Agarose fest geworden ist, schneiden Sie die Seiten der Form mit einem Skalpell ab, um die Agarose vorsichtig aus der Form zu entfernen, und verwenden Sie einen großzügigen Tropfen Cyanacrylatkleber, um den Agaroseblock auf einer Vibratom-Probenplatte zu befestigen.

Wenn der Kleber ausgehärtet ist, tauchen Sie den Agaroseblock in eiskaltes Verarbeitungsmedium und sprudeln Sie mit einer getrimmten, sterilen Kunststoffpipette ein Gemisch von 5 % CO2 95 % O2 in das Medium im Vibratom-Reservoir. Stellen Sie die Dicke der Vibratomscheibe auf 300 bis 350 Mikrometer ein und passen Sie die erweiterte Geschwindigkeit der Klinge und die Klingenamplitude entsprechend der Gewebekonsistenz und den Vibrationsspezifikationen an.

Erhalten Sie die entsprechende Anzahl von Scheiben entsprechend der geplanten experimentellen Analyse. Mit einem Mikrospatel aus Edelstahl werden die Scheiben bei der Aufnahme in eine Petrischale mit eiskaltem Verarbeitungsmedium überführt. Wenn alle Scheiben aufgenommen wurden, übertragen Sie mit dem Mikrospatel jede Scheibe auf einen einzelnen PTFE-Einsatz.

Nach einer 12- bis 24-stündigen Inkubation äquilibrieren Sie eine neue Sechs-Well-Platte mit frischem Scheibenkulturerhaltungsmedium für 15 Minuten im Zellkultur-Inkubator. Fassen Sie dann jeden Einsatz mit einer sterilen Pinzette am Rand und übertragen Sie die Einsätze in einzelne Vertiefungen der neuen Sechs-Well-Platte.

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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026