Erzeugung von Sphäroiden aus humanen pluripotenten Stammzellen

0 Ansichten3:00 Min. • July 8th, 2025

Beginnen Sie mit Kolonien von humanen pluripotenten Stammzellen oder hPSCs, die an ein geeignetes Substrat in einem Kulturmedium gebunden sind.

Entfernen Sie das Medium. Fügen Sie ein neuronales Medium hinzu, das spezifische Inhibitoren enthält, und inkubieren Sie.

Diese Inhibitoren lenken die Reifung von hPSCs in Richtung einer neuronalen Linie und bilden neuroektodermale Kolonien. Dabei handelt es sich um Vorläufer kleiner, kugelförmiger Strukturen, die als Sphäroide bezeichnet werden.

Entfernen Sie das Medium und waschen Sie es mit einem Salzpuffer.

Mit einem Verdauungsenzym inkubieren, um die Kolonien von der Platte zu lösen.

Fügen Sie das neuronale Medium hinzu, um die enzymatische Aktivität zu stoppen.

Sammle die Kolonien und übertrage sie in eine Röhre.

Lassen Sie sie sich absetzen und entsorgen Sie dann den Überstand.

Resuspendieren Sie die Kolonien in einem neuronalen Medium, das einen Wachstumsfaktor enthält.

Übertragen Sie die Kolonien auf eine Multi-Well-Platte und inkubieren Sie.

Dieser Wachstumsfaktor erleichtert die Selbstorganisation und Vermehrung von neuroektodermalen Zellen und führt dazu, dass sie ein Sphäroid bilden.

Zu Beginn plattieren Sie die hPSC-Kolonien auf einer hESC-qualifizierten Basalmembranmatrix aus einer Vertiefung einer 6-Well-Platte mit 60 % Konfluenz in drei Vertiefungen, um eine Dichte von 20 % bis 30 % zu erreichen, und fahren Sie dann mit der Induktion von neuroektodermalen 2D-Kolonien fort.

Geben Sie in den nächsten 3 Tagen täglich frisches N2-Medium, ergänzt mit dualen SMAD-Inhibitoren, in jede Vertiefung. Um neuroektodermale 3D-Sphäroide aus induzierten neuroektodermalen 2D-Kolonien zu erzeugen, entfernen Sie 2 Milliliter N2-Medium von der 6-Well-Platte und waschen Sie es einmal mit HBSS, um sicherzustellen, dass das gesamte N2-Medium entfernt wird.

Geben Sie 1 Milliliter Dispase in jede kolonieenthaltende Vertiefung. Inkubieren Sie die Platte 20 bis 25 Minuten lang bei 37 Grad Celsius und überprüfen Sie regelmäßig, ob sich die Kolonien ablösen. Um die Aktivität des Dispase-Enzyms zu stoppen, geben Sie am Ende der Inkubation 1 Milliliter N2-Medium in die Vertiefung. Übertragen Sie die Kolonien mit einer P1000-Pipettenspitze mit breitem Durchgang oder einem modifizierten P1000-Pipettenspitzenbecher mit steriler Schere in ein 15-Milliliter-Röhrchen und lassen Sie die Kolonieklumpen mit der Schwerkraft auf den Boden des Röhrchens sinken.

Entfernen Sie dann vorsichtig mit einer Standard-Pipettenspitze P1000 den Überstand. Ersetzen Sie es durch 1 Milliliter frisches N2-Medium und wiederholen Sie das Waschen dreimal, um sicherzustellen, dass die Abfälle vollständig entfernt werden. Nachdem Sie die Zellklumpen und das N2-Medium resuspendiert haben, übertragen Sie die Zellsuspension in eine Vertiefung einer 6-Well-Platte und fügen Sie 40 Nanogramm pro Milliliter bFGF hinzu.

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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026