Generierung von Endothelzellen des Gehirns aus induzierten pluripotenten Stammzellen

0 Ansichten4:35 Min. • July 8th, 2025

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Nehmen Sie eine induzierte pluripotente Stammzellkultur (iPSC) in Erhaltungsmedien, die Rho-Kinase-Inhibitoren enthalten.

Wachstumsfaktoren halten die Zellen undifferenziert, während Rho-Kinase-Inhibitoren das Überleben der Zellen verbessern.

Ersetzen Sie das Medium durch frische Erhaltungsmedien und entfernen Sie die Rho-Kinase-Inhibitoren. Inkubieren, Förderung der Koloniebildung.

Regelmäßig durch unkonditionierte Medien ersetzen, die eine kontrollierte Umgebung bieten und die iPSC-Differenzierung in neuronale Vorläuferzellen und dann Gehirnendothelzellen auslösen, gefolgt von der Zellproliferation.

Ersetzen Sie es durch Endothelzellmedien, die Retinsäure und Fibroblasten-Wachstumsfaktoren enthalten. Ausbrüten.

Fibroblasten-Wachstumsfaktoren erleichtern die Zellproliferation, während Retinsäure die Reifung der Endothelzellen des Gehirns fördert.

Fügen Sie proteolytische Enzyme hinzu, um die Zellen abzulösen. Sammeln Sie die Zellen und zentrifugieren Sie. Entsorgen Sie den Überstand.

Resuspendieren Sie die Zellen in endothelialen Medien und säen Sie sie auf einen Multiwell-Membraneinsatz, der mit Kollagen und Fibronektin beschichtet ist.

Die Vertiefung enthält endotheliale Medien. Inkubieren für selektive Adhäsion von Endothelzellen im Gehirn.

Ersetzen Sie das Medium durch nicht ergänzte endotheliale Medien für weitere Experimente.

Resuspendieren Sie 7,5 x 105 Zellen in 12 Millilitern Stammzellerhaltungsmedium und 10 mikromolaren ROCK-Inhibitoren. Die Matrix aus einem T75-Kolben aspirieren und die Zellsuspension in den Kolben übertragen. Schütteln Sie den Kolben, um die Zellen zu verteilen, und legen Sie ihn in den Inkubator.

Aktualisieren Sie das Medium in den nächsten zwei Tagen täglich, um den ROCK-Inhibitor zu entfernen und das Wachstum von Stammzellkolonien zu unterstützen. Beginnen Sie am dritten Tag mit der Differenzierung, indem Sie das Medium in ein unbedingtes Medium verwandeln.

Wechseln Sie das Medium in den nächsten fünf Tagen täglich. Sechs Tage nach Beginn der Differenzierung wird die Endothelzellpopulation selektiv erweitert, indem auf Endothelzell- oder EC-Medium mit 20 Nanogramm pro Milliliter bFGF und 10 mikromolare Retinsäure umgestellt wird. Inkubieren Sie die Zellen zwei Tage lang.

Bereiten Sie Kollagen IV und Fibronektinlösung gemäß den Anweisungen des Manuskripts vor und verwenden Sie es zum Beschichten von Zellkulturplatten. Aspirieren Sie das EC-Medium aus den Zellen und fügen Sie 12 Milliliter Zelldissoziationsreagenz hinzu. Den Kolben bei 37 Grad Celsius inkubieren, bis sich 90 % der Zellen abgelöst haben.

Während der Inkubationszeit die Beschichtungslösung von den zuvor vorbereiteten Platten entfernen und in einer sterilen Haube trocknen lassen. Sobald sich die Zellen abgelöst haben, verwenden Sie eine 10-Milliliter-Pipette, um eine Einzelzellsuspension herzustellen.

Übertragen Sie die Zellen in ein 50-Milliliter-Röhrchen und verdünnen Sie sie mit dem gleichen Volumen humanem endothelialem serumfreiem freiem Medium. Zählen Sie dann die Zellen mit einem Hämozytometer. Pelletieren Sie die Zellen bei 1.500 g für 10 Minuten. Anschließend werden sie in frisch aufbereitetem EC-Medium mit bFGF und Retinsäure für eine Konzentration von 2 Millionen Zellen pro Milliliter resuspendiert.

Geben Sie 500 Mikroliter der Zellsuspension auf die Oberseite eines 12-Well-Einsatzes und 1,5 Milliliter Medium auf die Unterseite. Verteilen Sie die Zellen gleichmäßig über den Einsatz und inkubieren Sie die Platte bei 37 Grad Celsius und 5 % Kohlendioxid. Wechseln Sie am nächsten Tag das Medium auf EC ohne bFGF oder Retinsäure.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026