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Nehmen wir geerntetes transgenes periaortales Fettgewebe der Maus, das fluoreszierende Protein-exprimierende Fettstammzellen enthält, die von Neuralleistenzellen (NCCs) abstammen.
Fügen Sie Verdauungsmedien hinzu und hacken Sie das Gewebe.
Übertragen Sie das zerkleinerte Gewebe mit dem Verdauungsmedium in ein Röhrchen. Dissoziieren Sie die Fragmente mechanisch.
ausbrüten. Die Kollagenase in den Medien verdaut die extrazelluläre Matrix des Gewebes und setzt Stammzellen, Adipozyten und Fibroblasten frei.
Fügen Sie serumhaltige Medien hinzu, um die Kollagenase-Aktivität zu stoppen. Zentrifugieren Sie den Überstand mit Adipozyten und verwerfen Sie ihn.
Suspendieren Sie die Zellen erneut in Medien, und filtern Sie, um Aggregate zu entfernen.
Das Filtrat zentrifugieren und den Überstand entfernen. Resuspendieren Sie die Zellen im Erythrozytenlysepuffer, um Erythrozyten zu lysieren.
Fügen Sie serumhaltigen Puffer hinzu, um die Lyse zu stoppen. Zentrifugieren und den Überstand verwerfen.
Resuspendieren Sie die Zellen im Puffer.
Führen Sie eine fluoreszenzaktivierte Zellsortierung durch, um fluoreszierende Stammzellen zu isolieren.
Die isolierten Stammzellen können für weitere Experimente verwendet werden.
Übertragen Sie das entnommene Fettgewebe in ein neues 2-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen, das 1 Milliliter frisch zubereitetes Verdauungsmedium enthält, und verwenden Sie eine chirurgische Schere, um das Gewebe zu zerkleinern. Übertragen Sie die Gewebeaufschlämmung in ein 50-Milliliter-Röhrchen mit 9 Millilitern frischem Verdauungsmedium und verwenden Sie eine 1-Milliliter-Pipette, um das Gewebe 10 Mal zu zerreiben.
Wenn eine homogene Lösung erhalten wurde, inkubieren Sie das Röhrchen 30 bis 45 Minuten lang bei 37 Grad Celsius und 100 Umdrehungen pro Minute und überprüfen Sie es alle 5 bis 10 Minuten, um eine Überverdauung zu vermeiden. Wenn beim sanften Schwenken des Röhrchens eine hellgelbe homogene Fettgewebslösung beobachtet werden kann, stoppen Sie die Verdauung mit 5 Millilitern HDMEM, ergänzt mit 10% fötalem Rinderserum. Nach einem gründlichen Mischen zentrifugieren Sie die Fettgewebsprobe.
Die stromale vaskuläre Zellfraktion wird als bräunliches Pellet sichtbar sein. Das Pellet wird in 10 Millilitern Nährmedium resuspendiert und die Zellsuspension durch ein 70-Mikrometer-Zellsieb filtriert.
Sammeln Sie die Zellen durch eine weitere Zentrifugation und resuspendieren Sie das Pellet vorsichtig in 5 Millilitern Erythrozyten-Lysepuffer. Übertragen Sie die Aufhängung auf ein 15-Millimeter-Rohr. Stoppen Sie die Reaktion nach 10 Minuten mit zwei Zentrifugen in 10 Millilitern PBS, ergänzt mit 1% fötalem Rinderserum.
Nach der zweiten Zentrifugation resuspendieren Sie das Pellet in 5 Millilitern Kulturmedium auf Eis und sammeln Sie die Zellen mit einer abschließenden Zentrifugation. Dann resuspendieren Sie die Zellen in 5 Millilitern FACS-Puffer zur Zählung.
Um eine NCADSC-Kultur nach ihrer Isolierung durch FACS gemäß Standardprotokollen einzurichten, legen Sie die Zellen in jeder Vertiefung in einer Konzentration von 5 x 103 Zellen procm2, eine 12-Well-Kulturplatte in vollständigem Kulturmedium bei 37 Grad Celsius und 5 % Kohlendioxid für 20 bis 24 Stunden. Waschen Sie die Zellen am nächsten Tag mit 37 Grad Celsius PBS und füttern Sie die Kultur mit frischem Kulturmedium.