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Nehmen Sie ein Schweinehirn.
Entfernen Sie die Hirnhäute, die Schutzmembran, die das Gehirn bedeckt, um eine Kontamination der Hirnhautzellen zu verhindern.
Kratzen Sie die graue Substanz ab, eine Region, die reich an Kapillaren ist, und sammeln Sie das Gewebe in einer Kulturschale mit Medien.
Führen Sie die graue Substanz ohne Nadel durch eine Spritze, um das Gewebe zu fragmentieren.
Übertragen Sie die Fragmente in einen Homogenisator und homogenisieren Sie, um das Gewebe weiter aufzulösen und die Gehirnkapillaren freizugeben.
Lassen Sie das Homogenat durch einen Filter mit einer bestimmten Porengröße, um die Kapillaren zurückzuhalten, damit andere Gehirnzellen durchströmen können.
Stellen Sie den Filter in eine Lösung, die Enzyme und DNase enthält.
Die Enzyme lösen die adhärenten Zellen ab, während DNase kontaminierende DNA abbaut und so die Isolierung reiner Kapillaren erleichtert.
Waschen Sie die Kapillaren aus dem Filter.
Fügen Sie Medien hinzu, die Serumproteine enthalten, um die Enzyme zu inaktivieren.
Übertragen Sie die Kapillaren in ein Röhrchen, zentrifugieren Sie und entfernen Sie den Überstand. Suspendieren Sie die reinen Kapillaren für die weitere Analyse in frischen Medien.
Um diesen Vorgang zu beginnen, legen Sie die Gehirne in eine sterile Flussbank und waschen Sie sie vorsichtig mit 1 Liter PBS in einem auf Eis gestellten Becherglas. Entfernen Sie als Nächstes vorsichtig die Hirnhäute mit einer Pinzette mit feiner Spitze aus jedem Gehirn. Kratzen Sie mit einem Skalpell die graue Substanz nacheinander vom Gehirn ab und geben Sie das isolierte Material in Petrischalen mit 20 Millilitern DMEM/F12, die auf Eis gestellt werden.
Für eine erste Fragmentierung führen Sie das Material der grauen Substanz ohne Nadel durch eine 50-Milliliter-Spritze. Wiederholen Sie den Vorgang für alle Gehirne und bündeln Sie das gesammelte Material der grauen Substanz. Übertragen Sie das isolierte Material der grauen Substanz mit DMEM/F12-Medium in das Mahlröhrchen eines tragbaren Gewebehomogenisators. Homogenisieren Sie das Material, indem Sie 8 Auf- und Abbewegungen mit einem losen Stößel ausführen, gefolgt von 8 Auf- und Abbewegungen mit einem festen Stößel.
Isolieren Sie anschließend die Kapillaren, indem Sie das Homogenat mit einer 500-Milliliter-Flasche mit blauem Verschluss mit Filterhalter und 140-Mikron-Filternetz filtrieren. Legen Sie die kapillarhaltigen Filter mit der Aufschlusslösung in Petrischale. Inkubieren Sie anschließend die Petrischalen bei 37 Grad Celsius für eine Stunde auf einem Orbitalschüttler bei 180 U/min oder rühren Sie sie alle 10 Minuten vorsichtig um.
Waschen Sie nach einer Stunde die Kapillaren von den Filtern mit Suspension aus der Petrischale ab. Teilen Sie dann die Suspension aus den drei Schalen in zwei 50-Milliliter-Röhrchen auf und stoppen Sie den Aufschluss, indem Sie 10 Milliliter DMEM/F12 in jedes 50-Milliliter-Röhrchen geben.
Die Zellsuspensionen werden 5 Minuten lang bei 250 mal g, 4 Grad Celsius zentrifugiert. Anschließend aspirieren Sie die Überstände und resuspendieren jedes Pellet in 10 Millilitern DMEM/F12. Geben Sie dann weitere 20 Milliliter DMEM/F12 in jedes Röhrchen.