Differenzierung von humaninduzierten pluripotenten Stammzellen in mikrovaskuläre Endothelzellen des Gehirns

0 Ansichten3:15 Min. • July 8th, 2025

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Beginnen Sie mit einer Multi-Well-Platte, die humaninduzierte pluripotente Stammzellen (iPSCs) in einem Medium mit einem Rho-Kinase-Inhibitor enthält, der das Überleben der Zellen fördert.

Ersetzen Sie das Medium durch ein essentielles Medium, das Nährstoffe und Wachstumsfaktoren enthält.

Inkubieren, um die Proliferation und Differenzierung von iPS-Zellen in Vorläuferzellen zu ermöglichen.

Ersetzen Sie dieses Medium durch ein Differenzierungsmedium, das mit Fibroblasten-Wachstumsfaktoren und Retinsäure ergänzt ist, und inkubieren Sie dann.

Die Wachstumsfaktoren erleichtern die Differenzierung von Vorläuferzellen zu mikrovaskulären Endothelzellen, während Retinsäure die Synthese von Tight-Junction-Proteinen fördert.

Waschen und behandeln Sie die Zellen mit einer Enzym-EDTA-Lösung, um die Zellen zu lösen und eine Einzelzellsuspension zu erzeugen.

Zentrifuge, um die Zellen zu sammeln und den Überstand zu entfernen. Dann resuspendieren Sie die Zellen in einem frischen Differenzierungsmedium.

Aussaat dieser Zellsuspension in eine Multi-Well-Platte, die mit Kollagen und Adhäsionsproteinen beschichtet ist.

Inkubieren, um die Zelladhäsion zu ermöglichen, und enge Verbindungen zwischen den Zellen bilden, die den mikrovaskulären Endothelzellen des Gehirns ähneln.

Um die BMEC-Differenzierung von humanen iPSCs zu induzieren, waschen Sie die konfluente iPSC-Kultur einmal mit DPBS, bevor Sie die Zellen etwa fünf Minuten lang bei 37 Grad Celsius mit dem entsprechenden Volumen enzymatischer EDTA inkubieren.

Wenn eine einzellige Suspension erhalten wurde, sammeln Sie die Zellen durch Zentrifugation und resuspendieren Sie das Pellet in einem geeigneten Volumen Stammzellmedium, ergänzt mit 10 mikromolaren ROCK-Inhibitoren zur Zählung.

Verdünnen Sie die Zellen auf eine Konzentration von 1,56 mal 10 bis 4 Zellen pro Kubikzentimeter und säen Sie 2 Milliliter Zellen in einzelne Vertiefungen mit einem 6-Well-Flachboden. Ersetzen Sie nach 24 Stunden im Zellkultur-Inkubator den Überstand in jeder Vertiefung durch E6-Medium und stellen Sie die Platte für weitere vier Tage in den Inkubator zurück.

Um die iPSC-abgeleiteten BMECs zu reinigen, beschichten Sie die Subkulturplatten mit dem entsprechenden Volumen einer frisch zubereiteten Kollagen-IV- und Fibronektin-Lösung pro Vertiefung und inkubieren Sie die Platten mindestens zwei Stunden lang bei 37 Grad Celsius.

Am 6. Tag der Differenzierung werden die Zellen durch Zentrifugation entnommen und die Pellets in dem entsprechenden Volumen an frischem humanem endothelialem serumfreiem Medium resuspendiert, das mit B27, dem basischen Fibroblasten-Wachstumsfaktor und Retinsäure ergänzt wird. Plattieren Sie die Zellen in jede Vertiefung einer mit Kollagen und Fibronektin beschichteten 24-Well-Platte mit flachem Boden.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026