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Nehmen wir humane induzierte pluripotente Stammzellkolonien (iPSC), die auf einer mit extrazellulärer Matrix beschichteten Platte kultiviert wurden.
Die iPSCs sind genetisch so verändert, dass sie Transkriptionsfaktoren exprimieren, die die Differenzierung von Motoneuronen induzieren.
Entfernen Sie das Medium und fügen Sie Enzyme hinzu, um die Kolonien zu lösen.
Dissoziieren Sie die Zellen mechanisch in eine einzellige Suspension und sammeln Sie sie.
Zentrifugieren und den Überstand entfernen.
Resuspendieren Sie die Zellen in Medien, die einen Inhibitor enthalten, der die zelluläre Apoptose verhindert.
Die Zellen auf einer mit Matrix beschichteten Schale anrichten.
Fügen Sie frische Differenzierungsmedien hinzu, die das Antibiotikum Doxycyclin und niedermolekulare Inhibitoren enthalten.
Doxycyclin induziert die Expression von Transkriptionsfaktoren, während die Inhibitoren spezifische Signalwege blockieren und so die iPSC-Differenzierung in Motoneuronen-Vorläuferzellen fördern.
Fügen Sie Enzyme hinzu, um die Zellen abzulösen.
Sammeln Sie die Zellen und dissoziieren Sie sie mechanisch.
Zentrifugieren und den Überstand verwerfen. Resuspendieren Sie die Zellen in neuronalen Medien.
Plattieren Sie die Zellen auf Adhäsionsprotein-beschichtete Mikroobjektträger, um die Zelladhärenz zu fördern.
Wachstumsfaktoren in den Medien induzieren die Reifung der Vorläuferzellen zu Motoneuronen.
Für die Differenzierung von Motoneuronen dissoziieren Sie die stabil transfizierten Zellkulturen mit einem Dissoziationsreagenz, wie gezeigt, um die Entnahme der Zellen in einem 15-Milliliter-Röhrchen mit 5 Volumina DMEM/F12-Medium zu ermöglichen. Nach der Zentrifugation resuspendieren Sie die Zellen in humanem iPSC-Medium, das mit einem mikromolaren ROCK-Inhibitor zur Zählung ergänzt wurde.
Säen Sie die Zellen auf matrixbeschichtete Schalen mit einer Dichte von 6,25 x 104 Zellen pro Quadratzentimeter. Ersetzen Sie die Überstände in den nächsten zwei Tagen durch frisches Differenzierungsmedium, das mit Doxycyclin ergänzt wird.
Am zweiten Tag wechseln Sie das Medium zu Neurobasal B27 Medium, das mit einem Gamma-Sekretase-Hemmer, einem vaskulären endothelialen Wachstumsfaktor-Rezeptor-Inhibitor und Doxycyclin ergänzt wird. Dissoziieren Sie die Zellen am fünften Tag wie gezeigt und resuspendieren Sie die abgelösten Zellen in 4 Millilitern DMEM/F12-Medium zur Zählung.
Pipettieren ist wichtig für eine vollständige Dissoziation der Zellen.
Frieren Sie ein Aliquot der Vorläuferzellen des Motoneurons gemäß den Anweisungen des Herstellers in Zellgefriermedium ein und sammeln Sie den Rest der Zellen durch Zentrifugation. Resuspendieren Sie das Pellet in neuronalem Medium, das mit 10 mikromolaren ROCK-Inhibitoren ergänzt wird.
Die Zellen werden auf Poly-Ornithin-laminin-beschichteten Objektträgerträgern mit Polymer-Deckgläsern mit einer Dichte von 1 x 105 Zellen pro Quadratzentimeter ausgesät. Ersetzen Sie das Medium am sechsten Tag vorsichtig durch frisches neuronales Medium ohne Inhibitor für die Kultur bis zur nachgelagerten Analyse, ohne die Zellen von der Stützoberfläche zu lösen.