Etablierung einer Ganzzell-Patch-Klemme für die elektrophysiologische Aufzeichnung von einer flach montierten Maus-Netzhaut

0 Ansichten4:05 Min. • July 8th, 2025

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Platzieren Sie eine flach montierte Mausnetzhaut in einer physiologischen Lösung in einer Aufnahmekammer.

Positionieren Sie mit einem Mikroskop eine Aufzeichnungspipette über der Netzhaut. Die Pipette enthält eine Elektrode und ist mit einer internen Lösung gefüllt.

Üben Sie einen Überdruck aus, um ein Verstopfen der Pipette zu verhindern, führen Sie ihn in die Netzhaut ein und reduzieren Sie dann den Druck, um Gewebeschäden zu vermeiden.

Schieben Sie die Pipette in Richtung der Starburst-Amakrinzellen (SACs), die synaptisch mit anderen Neuronen verbunden sind.

Nähern Sie sich einer Zelle, bis sich ein Grübchen auf ihrer Membran bildet. Lassen Sie den Druck ab, damit die Membran an der Spitze haften kann.

Verwenden Sie einen negativen Strom, um ein Membranpflaster in die Pipette zu ziehen.

Wenden Sie einen Sog an, um die Membran zu durchbrechen, um die Kontinuität zwischen der Elektrode und dem Zellzytoplasma herzustellen, eine Technik, die als Ganzzell-Patch-Clamp bezeichnet wird.

Um synaptische Ströme aufzuzeichnen, legen Sie eine Spannung an, um das Membranpotential des SAC konstant zu halten.

Die Neurotransmitter, die von synaptisch verknüpften Neuronen freigesetzt werden, lösen den Ionenfluss durch die synaptischen SAC-Rezeptoren aus, der von der Elektrode gemessen wird.

Bei diesem Verfahren filtrieren Sie die innere Lösung durch einen Spritzenvorsatzfilter in das benutzerdefinierte Verfüllfilament. Führen Sie dann das Filament in eine frisch gezogene Mikropipette ein und geben Sie die innere Lösung in der Nähe der Spitze ab, bis die Lösung den Silberelektrodendraht mehr als 5 Millimeter bedeckt. Befestigen Sie anschließend die Mikropipette an einem Elektrodenhalter mit einer Saugstange, durch die der Druck im Inneren der Elektrode durch Drücken oder Ziehen des Kolbens einer sondenangeschlossenen 10-Milliliter-Kunststoffspritze eingestellt werden kann.

Platzieren Sie dann die Pipette unter dem Objektiv und bringen Sie sie bis etwa 100 Mikrometer über die Netzhaut. Verwenden Sie im Stromfolgermodus den DC-Offset, um das stehende Gleichspannungssignal auf Null zu setzen. Messen Sie den Pipettenwiderstand im Stromzangenmodus, indem Sie Rechteckströme mit fester Amplitude durch die Pipette injizieren, während sie sich im Bad befindet. Neutralisieren Sie die Differenz, indem Sie den R-Zugriffsknopf drehen und den Messwert verwenden, um den Pipettenwiderstand zu berechnen.

Bringen Sie die Elektrode danach langsam auf etwa 10 Mikrometer über die Netzhaut. Üben Sie Überdruck auf die Elektrode aus. Beobachten Sie dann, wie sich die Reflexion auf die Pipettenspitze verlagert, wenn sie sich der Netzhaut nähert.

Drücken Sie die Pipette schnell aber vorsichtig in den GCL und reduzieren Sie sofort den Überdruck. Bewegen Sie die Pipette in Richtung eines markierten Neurons und vermeiden Sie den Kontakt mit anderen Neuronen, Blutgefäßen und Endfüßen von Müller-Zellen. Üben Sie bei Bedarf mehr Überdruck aus, um ein Verstopfen der Elektrode zu verhindern.

Positionieren Sie anschließend die Pipettenspitze in der Nähe des markierten Neurons, bis ein Grübchen sichtbar ist. Lassen Sie dann den Überdruck ab und lassen Sie die Plasmamembran zurück auf die Pipettenspitze prallen. Wenden Sie negative Ströme von 20 bis 120 Piko-Ampere an die Pipette an, um die Bildung einer Giga-Ohm-Dichtung zu unterstützen.

Es ist wichtig, dass die Zellmembran nach dem Ablassen des Überdrucks zurückprallen kann, da eine hervorragende Abdichtung, die auf natürliche Weise zwischen der Membran und der Pipettenöffnung gebildet wird, wichtig ist, um die Zellmorphologie nach der Aufzeichnung zu erhalten.

Ziehen Sie die Plasmamembran bei Bedarf durch einen sanften Sog in die Pipette. Warten Sie fünf Minuten nach der Versiegelungsbildung, um die Zellmembran zu durchbrechen, damit die verschüttete innere Lösung durch Superfusion entfernt werden kann. Schalten Sie nach dem Bruch der Membran und im aktuellen Clamp-Modus die Brückenbalance ein und stellen Sie sie mit dem R-Achsen-Knopf ein. Zeichnen Sie die erregenden und hemmenden postsynaptischen Ströme im Spannungsklemmmodus auf, indem Sie die Zelle auf Umkehrpotentiale halten.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026